Bouturer la misère : 10 à 15 cm, 2 à 3 semaines et un pot drainant

Une tige de 10 à 15 cm, un nœud dans l’eau et une lumière sans soleil direct : la misère se bouture sans matériel compliqué. Le vrai piège consiste à garder la base humide sans transformer le verre ou le pot en piscine.

Le nœud du problème : choisir la bonne tige

a close up of a plant with green leaves
Photo de Aswin Karuvally sur Unsplash.

Le nom de misère regroupe plusieurs plantes du genre Tradescantia. La misère pourpre correspond notamment à Tradescantia pallidatandis que d’autres formes portent un feuillage vert, panaché ou violacé. Pour le bouturage, toutes ont un point pratique en commun : les nœuds, ces zones de la tige où partent les feuilles et où de nouvelles racines peuvent apparaître.

En intérieur, le bouturage reste possible toute l’année. Le printemps et la fin de l’été sont toutefois plus favorables, car la plante pousse alors davantage. Pour une misère destinée à rester dehors, attendez la fin des gelées et des nuits qui descendent sous 10 °C avant de la sortir ou de prélever une tige pour l’extérieur.

Choisissez une extrémité de tige saine, ferme et bien feuillée. Une longueur de 10 à 15 cm suffit. Les boutures géantes donnent surtout une tige plus difficile à maintenir droite : la botanique apprécie la mesure, même quand le jardinier veut envoyer du lourd.

Ciseau net, bouture faite

  1. Nettoyez un couteau ou un sécateur bien affûté.
  2. Prélevez une extrémité de tige de 10 à 15 cm sur une plante vigoureuse.
  3. Retirez les feuilles de la partie basse pour qu’elles ne touchent pas l’eau ou le substrat.
  4. Coupez juste sous un nœud et gardez au moins un nœud dégagé pour l’enracinement.

Le nœud doit rester au contact de l’humidité, tandis que le feuillage doit rester au sec. Les feuilles immergées se décomposent rapidement et peuvent faire ramollir la tige. Une bonne bouture commence par un nœud sain, pas par une tige interminable.

À l’eau de là : les racines prennent le relais

clear drinking glass on gray surface
Photo de KOBU Agency sur Unsplash.

Placez la bouture dans un récipient propre en immergeant un ou deux nœuds inférieurs. Maintenez toutes les feuilles au-dessus du niveau de l’eau. Posez le verre dans un endroit lumineux, mais sans soleil direct sur la tige : derrière une vitre très chaude, la bouture se déshydrate plus vite qu’elle ne s’enracine.

Renouvelez l’eau régulièrement pour la garder claire. Une eau trouble, une tige qui ramollit ou une odeur désagréable indiquent que la bouture se conserve mal. Dans ce cas, recoupez une extrémité saine au lieu d’attendre un miracle au fond du verre. Oui, même la misère a ses limites.

Les premières racines apparaissent généralement au niveau des nœuds après deux à trois semaines. Attendez que plusieurs d’entre elles atteignent environ 2 cm avant le repiquage. Des racines plus courtes se cassent facilement lors de la plantation.

Rempotage sans naufrage : le terreau garde la mesure

brown and green chocolate cake
Photo de Timothy Dykes sur Unsplash.

Préparez un petit pot percé avec un mélange léger composé de trois quarts de terreau et d’un quart de sable. Ce substrat doit laisser l’eau s’écouler par le fond au lieu de former une masse compacte autour des racines.

Creusez un trou assez profond pour placer les racines sans les plier. Installez la bouture, tassez doucement le terreau autour de la tige, puis arrosez pour mettre le substrat en contact avec les racines. Ensuite, gardez-le légèrement humide et videz la soucoupe après l’arrosage. Une vraie déception, la bouture qui pourrit dans un pot pourtant fraîchement rempoté.

Le bouturage directement dans le terreau fonctionne aussi. Plantez la base de la tige dans un mélange humide et drainant, en enterrant au moins un nœud et en laissant les feuilles hors du substrat. Cette méthode évite le changement entre l’eau et le terreau, mais elle ne permet pas de voir les racines apparaître.

Le bon substrat retient un peu d’humidité, jamais l’eau en permanence.

Pourpre et fière : lumière, eau et taille au cordeau

A close up of a plant with purple flowers
Photo de Tadeusz Zachwieja sur Unsplash.

Après le rempotage, installez la bouture dans un endroit lumineux sans soleil direct intense, le temps qu’elle reprenne. Une misère pourpre adulte, Tradescantia pallidaaccepte ensuite le plein soleil ou la mi-ombre. Une bonne lumière renforce généralement sa coloration. Les formes vertes ou panachées peuvent souffrir derrière une vitre exposée plein sud en été.

L’arrosage dépend du pot, du substrat, de la température et de la lumière. Touchez le terreau avant d’arroser et vérifiez que l’eau s’écoule bien. En hiver, espacez les arrosages. Des racines molles signalent souvent un excès d’eau ou un drainage insuffisant, pas un manque de bonne volonté du jardinier.

Pour garder une plante dense, coupez les tiges trop longues juste au-dessus d’une feuille. De nouvelles ramifications peuvent repartir plus bas, et les extrémités coupées fournissent d’autres boutures. La misère pousse, s’allonge, se fait tailler, puis recommence avec un aplomb remarquable.

Hormones? Pas besoin d’en faire tout un pot

Close-up of green leaves in a greenhouse
Photo de Christopher Stites sur Unsplash.

La misère s’enracine facilement à partir de ses nœuds. Rien ne justifie donc une dose improvisée d’hormone de bouturage. Commencez par une tige saine, une lumière adaptée et un substrat qui évacue l’eau.

Une étude publiée en août 2025 dans la revue Plants a obtenu 85 % d’enracinement avec 5 000 ppm d’acide indole-3-butyrique sur des boutures de Photinia × fraseriaprès 120 jours en serre sur perlite. La publication scientifique précise aussi que le protocole associait plusieurs concentrations d’auxines et une température contrôlée de la zone racinaire, autour de 20 °C.

Ce résultat concerne un arbuste ligneux, une serre et un protocole expérimental précis. Il ne donne pas une dose pour la misère. Copier ce chiffre sur une bouture de Tradescantia serait donc une mauvaise lecture de l’étude : l’espèce, le tissu prélevé, le substrat et la température modifient la réponse.

Pour la misère, le nœud et le drainage passent avant la potion de laboratoire.

Misère dehors, thermomètre en main

Colorful shipping containers stacked in an outdoor storage area in Germany.
Photo de Nevil Patel sur Pexels.

Une misère cultivée en pot peut sortir lorsque les gelées ne sont plus à craindre et que les nuits restent au-dessus de 10 °C. Au printemps, rentrez-la si les températures nocturnes chutent encore. Une installation extérieure demande un sol drainant et une exposition adaptée à la variété : la misère pourpre tolère le soleil ou la mi-ombre, tandis que les feuillages plus délicats réclament davantage de prudence derrière une vitre très exposée.

Que la bouture ait commencé dans l’eau ou directement dans le terreau, les mêmes repères restent valables : une tige courte, un nœud humide, des feuilles hors de l’eau et un pot percé. Après deux ou trois semaines, le verre n’est plus une nursery mais une étape dépassée. Le voisin pourra toujours conseiller de le remplir jusqu’au bord; les racines, elles, ont déjà voté.

Sources et références scientifiques
  1. Comparative Evaluation and Optimization of Auxin Type and Concentration on Rooting Efficiency of Photinia × fraseri Dress: Stem Cuttings Using Response Surface Methodology – PMC. Plants (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/plants14152420 · PMID: 40805765.
  2. 1.Pulatkan M., Oğuztürk G.E. Investigate of landscape design use possibilities of some native Ericaceae family plants in Turkey. Düzce Univ. Fac. For. J. For. 2024;20:139-154. doi: 10.58816/duzceod.1447316. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.58816/duzceod.1447316.
  3. en J., Henny R.J., McConnell D.B. Development of new foliage plant cultivars. Trends New Crops New Uses. 2002;5:466-472. [Google Scholar].
  4. 3.Davis T.D., Potter J.R. High CO2 applied to cuttings: Effects on rooting and subsequent growth in ornamental species. HortScience. 1983;18:194-196. doi: 10.21273/HORTSCI.18.2.194. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.21273/HORTSCI.18.2.194.
  5. 4.Dirr M.A. Effects of selected pruning methods on subsequent growth of Photinia × fraseri. J. Environ. Hortic. 1984;2:81-83. doi: 10.24266/0738-2898-2.3.81. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.24266/0738-2898-2.3.81.
  6. 5.Özel H.B., Yücedağ C., Ayan S. Growth Performances of Photinia× fraseri Dress. Seedlings from Cuttings of Five Ortets in Different Districts. SilvaWorld. 2023;2:60-65. [Google Scholar].
  7. 6.Land S.B., Jr., Cunningham M. Rooted Cutting Macropropagation of Hardwoods. Gen. Tech. Rep. SO. 1977:108-120. [Google Scholar].
  8. 7.Qadir M.M.A., Hawramee O.K.A. The rooting capacity of red tip photinia; Photinia× fraseri hardwood cuttings under the effects of cutting time and IBA concentration. J. Kerbala Agric. Sci. 2022;9:118-133. doi: 10.59658/jkas.v9i4.1068. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.59658/jkas.v9i4.1068.
  9. 8.Khan M.I.R., Khan N.A., editors. Reactive Oxygen Species and Antioxidant Systems in Plants: Role and Regulation Under Abiotic Stress. Springer; Singapore: 2017. [Google Scholar].
  10. 9.Ma B., Hu H., Liu X., Wang Q., Zhou H., Chen S., Liu J., Li Y. Response of Four Shrubs to Drought Stress and Comprehensive Evaluation of Their Drought Resistance. Agriculture. 2025;15:1211. doi: 10.3390/agriculture15111211. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/agriculture15111211.
  11. 10.Liu K., Deng F., Zeng F., Chen Z.H., Qin Y., Chen G. Plant growth-promoting rhizobacteria improve drought tolerance of crops: A review. Plant Growth Regul. 2025;105:567-581. doi: 10.1007/s10725-025-01300-y. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s10725-025-01300-y.
  12. 11.Kurniawan A., Maghfoer M.D., Rahmandhias D.T., Maulidah N.I. Optimization of Ornamental Plant Production through the Application of PGPR in Gunungsari Village, Bumiaji District. Teumulong J. Community Serv. 2025;3:43-51. doi: 10.62568/jocs.v3i2.191. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.62568/jocs.v3i2.191.
  13. 12.Goodman E.A., Anderson N.O. Vegetative propagation of Linum spp. HortScience 2025, 60, 317-324. HortScience. 2025;60:317-324. doi: 10.21273/HORTSCI18292-24. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.21273/HORTSCI18292-24.
  14. Impact of Auxins on Vegetative Propagation through Stem Cuttings of Couroupita guianensis Aubl.: A Conservation Approach – PMC. Scientifica. DOI: 10.1155/2016/6587571 · PMID: 28083155.
  15. 1.Lim T. K. Edible Medicinal and Non Medicinal Plants Fruits. Berlin, Germany: Springer; 2012. Couroupita guianensis. [Google Scholar].
  16. 2.Mitre M. IUCN Red List of Threatened Species. Version 2012.2. 2012. Couroupita guianensis. [Google Scholar].
  17. 3.Rai Y. Early seedling growth status of threatened medicinal tree species Couroupita guianensis Aubl. in District Meerut, (U.P.) India. International Journal of Innovation and Scientific Research. 2014;8(2):252-255. [Google Scholar].
  18. 4.Sai K. C., Gaddala N., Vanamala S., Naresh V., Elumalai A. A short review on therapeutic uses of Couroupita guianensis Aubl. International Research Journal of Pharmaceutical and Applied Sciences. 2011;1(1):105-108. [Google Scholar].
  19. 5.Sundararajan R., Koduru R. A complete profile on Couroupita guianensis-traditional uses, pharmacological activities and phytoconstituents. Pharmacophore. 2014;5(1):147-159. [Google Scholar].
  20. 6.Manimegalai S., Rakkimuthu G. Phytochemical screening of stem of Couroupita guianensis. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2012;3(11):4434-4437. [Google Scholar].
  21. 7.Shete S. A., Shah G. N., Walke S. S., Patil V. S., Patil K. D., Killedar S. G. Standardization and anti bacterial activity of Couroupita guianensis fruit shell extract. International Journal of Biology. 2013;2(1):360-364. [Google Scholar].
  22. 8.Swapnalatha S., Rajeswari V. D. Antidiabetic activity of couroupita guianensis, a review. IOSR Journal of Pharmacy and Biological Sciences. 2014;9(3):41-43. doi: 10.9790/3008-09334143. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.9790/3008-09334143.
  23. 9.Gupta V. H., Juvekar A. R. Antistress and antioxidant activity of flower of Couroupita guianensis in rats. An International Journal of Advances in Pharmaceutical Sciences. 2013;4(1):76-83. [Google Scholar].
  24. 10.Bhuvaneswari S., Deepa S., Sripriya N., Prameela L., Udaya Prakash N. K. Antioxidant activity and phytochemistry of various flowers from Tamil Nadu, India. International Journal of Research in Pharmaceutical Sciences. 2014;5(1):40-45. [Google Scholar].
  25. 11.Umachigi S. P., Jayaveera K. N., Ashok Kumar C. K., Kumar G. S. Antimicrobial, wound healing and antioxidant potential of Couroupita guianensis in rats. Pharmacology Online. 2007;3(1):269-281. [Google Scholar].
  26. 12.Pradhan D., Panda P. K., Tripathy G. Evaluation of the immunomodulatory activity of the methanolic extract of Couroupita guianensis aubl. flowers in rats. Natural Product Radiance. 2009;8(1):37-42. [Google Scholar].
  27. Multifarious Characterization and Efficacy of Three Phosphate-Solubilizing Aspergillus Species as Biostimulants in Improving Root Induction of Cassava and Sugarcane Stem Cuttings – PMC. Plants (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/plants12203630 · PMID: 37896093.
  28. 1.Kumar S., Kumar S., Mohapatra T. Interaction between macro- and micro-nutrients in plants. Front. Plant Sci. 2021;12:665583. doi: 10.3389/fpls.2021.665583. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fpls.2021.665583.
  29. 2.Khan M.S., Zaidi A., Ahemad M., Ahemad M., Wani P.A. Plant growth promotion by phosphate solubilizing fungi-current perspective. Arch. Agron. Soil Sci. 2010;56:73-98. doi: 10.1080/03650340902806469. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1080/03650340902806469.
  30. 3.Sharma S.B., Sayyed R.Z., Trivedi M.H., Gobi T.A. Phosphate solubilizing microbes: Sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils. SpringerPlus. 2013;2:587. doi: 10.1186/2193-1801-2-587. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/2193-1801-2-587.
  31. 4.Jain R., Saxena J., Sharma V. Differential effects of immobilized and free forms of phosphate-solubilizing fungal strains on the growth and phosphorus uptake of mung bean plants. Ann. Microbiol. 2014;64:1523-1534. doi: 10.1007/s13213-013-0795-6. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s13213-013-0795-6.
  32. 5.Gyaneshwar P., Naresh K.G., Parekh L.J., Poole P.S. Role of soil microorganisms in improving P nutrition of plants. Plant Soil. 2002;245:83-93. doi: 10.1023/A:1020663916259. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1023/A:1020663916259.
  33. 6.Mendoza-Arroyo G.E., Chan-Bacab M.J., Aguila-Ramírez R.N., Ortega-Morales B.O., Solís R.E.C., Chab-Ruiz A.O., Cob-Rivera K.I., Dzib-Castillo B., Tun-Che R.E., Camacho-Chab J.C. Inorganic phosphate solubilization by a novel isolated bacterial strain Enterobacter sp. ITCB-09 and its application potential as biofertilizer. Agriculture. 2020;10:383. doi: 10.3390/agriculture10090383. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/agriculture10090383.
  34. 7.Mengel K., Kirkby E.A., Kosegarten H., Appel T. Phosphorus. In: Mengel K., Kirkby E.A., Kosegarten H., Appel T., editors. Principles of Plant Nutrition. Springer; Dordrecht, The Netherlands: 2001. pp. 453-479. [DOI] [Google Scholar].
  35. 8.Zhou K., Binkley D., Doxtader K.G. A new method for estimating gross phosphorus mineralization and immobilization rates in soils. Plant Soil. 1992;147:243-250. doi: 10.1007/BF00029076. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/BF00029076.
  36. chtaoui N., Rabiu M.K., Raklami A., Oufdou K., Hafidi M., Jemo M. Phosphate-dependent regulation of growth and stresses management in plants. Front. Plant Sci. 2021;12:679916. doi: 10.3389/fpls.2021.679916. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fpls.2021.679916.
  37. 10.Rengel Z., Marschner P. Nutrient availability and management in the rhizosphere: Exploiting genotypic differences. New Phytol. 2005;168:305-312. doi: 10.1111/j.1469-8137.2005.01558.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1469-8137.2005.01558.x.
  38. 11.Hasnain M., Chen J., Ahmed N., Memon S., Wang L., Wang Y., Wang P. The effects of fertilizer type and application time on soil properties, plant traits, yield and quality of tomato. Sustainability. 2020;12:9065. doi: 10.3390/su12219065. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/su12219065.
  39. ang C.H., Yang S.S. Thermo-tolerant phosphate-solubilizing microbes for multi-functional biofertilizer preparation. Bioresour. Technol. 2009;100:1648-1658. doi: 10.1016/j.biortech.2008.09.009. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2008.09.009.
  40. Effect of Fluridone on Roots and Leaf Buds Development in Stem Cuttings of Salix babylonica (L.) ‘Tortuosa’ and Related Metabolic and Physiological Traits – PMC. Molecules (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/molecules29225410 · PMID: 39598799.
  41. 1.Sandmann G., Schmidt A., Linden H., Böger P. Phytoene desaturase, the essential target for bleaching herbicides. Weed Sci. 1991;39:474-479. doi: 10.1017/S0043174500073240. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1017/S0043174500073240.
  42. 2.Michel A., Arias R.S., Scheffler B.E., Duke S.O., Netherland M., Dayan F.E. Somatic mutation-mediated evolution of herbicide resistance in the nonindigenous invasive plant hydrilla (Hydrilla verticillata) Mol. Ecol. 2004;13:3229-3237. doi: 10.1111/j.1365-294X.2004.02280.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1365-294X.2004.02280.x.
  43. 3.Rasmussen N., Conrad J.L., Green H., Khanna S., Wright H., Hoffmann K., Caudill J., Gilbert P. Efficacy and fate of fluridone applications for control of invasive submersed aquatic vegetation in the estuarine environment of the Sacramento-San Joaquin Delta. Estuar. Coast. 2022;45:1842-1860. doi: 10.1007/s12237-022-01079-5. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s12237-022-01079-5.
  44. 4.Khanna S., Gaeta J.W., Conrad J.L., Gross E.S. Multi-year landscape-scale efficacy analysis of fluridone treatment of invasive submerged aquatic vegetation in the Sacramento-San Joaquin Delta. Biol. Invasions. 2023;25:1827-1843. doi: 10.1007/s10530-023-03013-7. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s10530-023-03013-7.
  45. 5.Gettys L.A., Leon R.G. A population genetics approach for the study of fluridone resistance in hydrilla. Aquat. Invasions. 2021;16:28-42. doi: 10.3391/ai.2021.16.1.03. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3391/ai.2021.16.1.03.
  46. 6.Butts T.R., Souza M.C., Norsworthy J.K., Barber L.T., Hardke J.T. Rice response to fluridone following topsoil removal on a precision-leveled field. Agrosys. Geosci. Environ. 2024;7:e20541. doi: 10.1002/agg2.20541. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/agg2.20541.
  47. 7.Butts T.R., Kouame K.B.J., Norsworthy J.K., Barber L.T. Arkansas rice: Herbicide resistance concerns, production practices, and weed management costs. Front. Agron. 2022;4:881667. doi: 10.3389/fagro.2022.881667. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3389/fagro.2022.881667.
  48. 8.Breitenbach J., Sandmann G. ζ-Carotene cis isomers as products and substrates in the plant poly-cis carotenoid biosynthetic pathway to lycopene. Planta. 2005;220:785-793. doi: 10.1007/s00425-004-1395-2. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00425-004-1395-2.
  49. 9.Rodríguez-Villalón A., Gas E., Rodríguez-Concepción M. Phytoene synthase activity controls the biosynthesis of carotenoids and the supply of their metabolic precursors in dark-grown Arabidopsis seedlings. Plant J. 2009;60:424-435. doi: 10.1111/j.1365-313X.2009.03966.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1365-313X.2009.03966.x.
  50. 10.Schmitz N., Xia J.H., Kermode A.R. Dormancy of yellow cedar seeds is terminated by gibberellic acid in combination with fluridone or with osmotic priming and moist chilling. Seed Sci. Technol. 2001;29:331-346. [Google Scholar].
  51. 11.Jiang Y., Joyce D. ABA effects on ethylene production, PAL activity, anthocyanin and phenolic concentrations of strawberry fruit. J. Plant Growth Regul. 2003;39:171-174. doi: 10.1023/A:1022539901044. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1023/A:1022539901044.
  52. 12.Yamazaki H., Nishijima T., Yamato Y., Koshioka M., Miura H. Involvement of abscisic acid (ABA) in bulb dormancy of Allium wakegi Araki I. Endogenous levels of ABA in relation to bulb dormancy and effects of exogenous ABA and fluridone. Plant Growth Regul. 1999;29:189-194. doi: 10.1023/A:1006212427997. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1023/A:1006212427997.
  53. Bruno Nunez. Comment bouturer la misère?. 2015.
  54. Jardinier du dimanche. Bouture de misère (tradescantia) : quand et comment bouturer une misère?. 2023.
  55. Comment faire une bouture d'une misère pourpre?.
  56. Ulla Rothschuh Osorio. Tradescantia pallida ou misère pourpre : bouture, entretien et arrosage. 2023.
ERIC
ERIC
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.

Read More

Related Articles

LAISSER UN COMMENTAIRE

S'il vous plaît entrez votre commentaire!
S'il vous plaît entrez votre nom ici