À 1,5 % de sel, le lombricompostage tourne vite au menu indigeste. Une étude publiée dans la collection de janvier 2026 observe une mortalité de 24,33 % des vers et une baisse nette de la qualité du vermicompost. Le chiffre alerte, mais il ne devient pas pour autant une recette à reproduire dans un bac domestique.
Le sel met le ver à cran
Un lombricomposteur fait travailler ensemble des vers épigés, des bactéries, des champignons, de l’humidité et de l’oxygène. La composition des déchets compte donc autant que la quantité. Dans un système aussi petit, un apport très salé ne se dilue pas comme par magie.
L’étude Effects of Salt Stress on Earthworm Function and Compost Quality During Vermicomposting of Kitchen Wastespubliée dans Bioengineering dans la collection de janvier 2026 après une acceptation le 25 décembre 2025, compare un groupe témoin sans sel à un groupe contenant 1,5 % de chlorure de sodium. Cette concentration équivaut à 15 grammes par kilogramme de matière.
Après le vermicompostage, le groupe salé comptait moins de vers et moins de biomasse. La mortalité atteignait 24,33 %, tandis que la sécrétion de mucus diminuait de 82,6 %. La transformation de la matière ralentissait aussi, avec une baisse de 23,7 % de l’indice d’humification et de 41,2 % de l’indice bêta-alpha. Le sel touche donc à la fois les animaux, les microbes et la maturation du compost.
La communauté microbienne changeait également. L’abondance des Ascomycota baissait de 37,5 %, celle des Bacteroidetes progressait de 58,3 % et celle des Proteobacteria reculait de 72,3 %. Ce résultat décrit une expérience contrôlée, pas un seuil universel pour tous les lombricomposteurs. Ça ne négocie pas avec le sel.
Eisenia, pas le lombric de jardin
Les vers de surface ne font pas le grand plongeon
Les lombricomposteurs utilisent des vers épigés du genre Eisenia. Ils vivent dans les couches superficielles riches en matière organique et supportent les apports réguliers de déchets. Le lombric commun du jardin, Lumbricus terrestrisfonctionne autrement : il creuse le sol et se nourrit surtout de matière déjà transformée. Le ramasser au potager pour le jeter dans un bac serait donc une drôle d’idée.
Pour démarrer, installez une litière humide, sombre et aérée, puis ajoutez les vers adaptés. Les premiers apports doivent rester modestes. Recouvrez les déchets avec une matière sèche et observez la vitesse à laquelle ils disparaissent. Si la nourriture s’accumule, si l’odeur devient acide ou si les vers restent en surface, le bac réclame moins de nourriture et davantage de matière sèche.
Les épluchures, les morceaux de fruits, les restes végétaux et les petites quantités de matière organique peu transformée sont plus faciles à intégrer que des plats cuisinés fortement assaisonnés. Les agrumes appellent aussi de la mesure lorsqu’ils arrivent en grande quantité. Un bac qui reçoit plus vite qu’il ne transforme finit par se farcir une crise de digestion.
Le lombricompostage demande donc une observation régulière : texture, odeur, humidité, vitesse de disparition des apports et présence des vers. Le sol est un organisme vivant qu’on nourrit, et le bac fonctionne sur le même principe de mesure. Chez Jardin-Bio, on préfère cette règle simple aux promesses qui sonnent creux.
Microplastiques et arsenic, le bac n’a pas de filtre magique
L’article Plasmid-Mediated Spread of Antibiotic Resistance by Arsenic and Microplastics During Vermicompostingpublié dans Antibiotics en décembre 2025, étudie un contexte bien différent d’une cuisine : du fumier laitier soumis au vermicompostage avec de l’arsenic et des microplastiques en polyéthylène téréphtalate.
Les chercheurs ont suivi les plasmides, des éléments génétiques capables de transporter des gènes de résistance aux antibiotiques entre bactéries. Dans leur dispositif contrôlé, le vermicompostage seul enrichissait surtout des plasmides non mobilisables. Les microplastiques favorisaient les plasmides conjugatifs et mobilisables, tandis que l’arsenic augmentait les différents types étudiés.
La combinaison des deux contaminants augmentait l’abondance totale des gènes de résistance, avec un effet synergique alors que la quantité totale de plasmides ne changeait pas. Cette observation concerne du fumier, des contaminants ajoutés et des conditions expérimentales précises. Elle ne signifie pas qu’un lombricomposteur de cuisine produit systématiquement ce résultat.
La limite pratique est néanmoins nette : le vermicompostage ne neutralise pas un polluant déjà présent dans la matière première. N’introduisez donc ni fragments de plastique, ni poussières d’origine inconnue, ni matériaux traités dans le bac. Le plastique qui compose le contenant n’est pas la même chose que des microplastiques mélangés au substrat, distinction utile quand les conseils du voisin partent en vrille.
Nano-biochar, la particule fait-elle le poids?

La publication Nano-biochar Regulates Phage-Host Interactions, Reducing Antibiotic Resistance Genes in Vermicomposting Systemsparue dans les Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America le 26 août 2025, analyse les interactions entre phages et bactéries pendant le vermicompostage.
Les chercheurs ont combiné métagénomique, viromique et validations en laboratoire. Dans le vermicompost étudié, les phages lytiques dominaient et pouvaient éliminer certaines bactéries. Le nano-biochar modifiait les interactions entre phages et hôtes, favorisait un mécanisme de type « phage shunt » et réduisait la transmission de gènes de résistance aux antibiotiques dans ce modèle.
Le résultat éclaire un mécanisme précis de gestion des déchets. Il ne valide pas l’ajout de particules nanométriques dans un lombricomposteur domestique, et il ne fournit ni dosage ni consigne pour un jardin. Nano-biochar et matière carbonée ordinaire ne sont pas deux noms interchangeables.
Algues échouées, le bac ne fait pas marée basse
L’étude Taxonomic and Functional Dynamics of Bacterial Communities During Drift Seaweed Vermicompostingpubliée dans Microorganisms en janvier 2025, suit les communautés bactériennes d’algues échouées pendant leur vermicompostage.
La transformation modifiait fortement la composition microbienne. Entre les algues brutes et le vermicompost, seules 21 à 56 unités taxonomiques bactériennes étaient communes parmi plus de 900 observées par type d’échantillon. La diversité bactérienne augmentait en moyenne de 32 % au fil des prélèvements.
La publication décrit aussi des voies fonctionnelles liées à la santé du sol et à la croissance des plantes, notamment la synthèse d’acides aminés et de phytohormones. Elle ne donne pas pour autant une dose d’algues à verser dans un bac domestique ni une promesse de rendement au potager. Une matière échouée doit rester un apport à évaluer, pas un tapis entier à jeter dans le composteur parce que la plage en a livré trois tonnes.
Récolter sans jouer au loto microbien
Une routine sobre permet de garder le contrôle du système :
- préparez une litière humide, sombre et aérée avant l’arrivée des vers;
- utilisez des vers du genre Eiseniaadaptés aux matières organiques de surface;
- commencez par de petites quantités d’épluchures et de restes végétaux;
- alternez les apports humides avec du carton brun déchiré ou une matière sèche adaptée;
- réduisez les apports si les déchets restent visibles, si l’odeur devient acide ou si des moucherons apparaissent;
- séparez le lombricompost mûr des déchets encore reconnaissables avant de l’utiliser au jardin.
Les publications sur le sel, les contaminants, le nano-biochar et les algues ont un point commun : elles étudient des mécanismes précis dans des conditions définies. Elles ne transforment pas un bac domestique en laboratoire et ne garantissent pas une récolte particulière. Le lombricompost peut fournir une matière organique utile, mais il ne corrige pas par simple tour de magie un sol compact, salé ou pollué.
Le bon réflexe reste donc l’observation des apports et de la réaction du bac. Quant au voisin qui conseille de mettre la sauce du dimanche avec les épluchures, les vers ont déjà rendu leur avis.
Sources et références scientifiques
- Nano-biochar regulates phage-host interactions, reducing antibiotic resistance genes in vermicomposting systems – PMC. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. DOI: 10.1073/pnas.2511986122 · PMID: 40838886.
- 1.Zhang J., et al., Viral communities contribute more to the lysis of antibiotic-resistant bacteria than the transduction of antibiotic resistance genes in anaerobic digestion revealed by metagenomics. Environ. Sci. Technol. 58, 2346-2359 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- 2.Wang J., et al., Supercarriers of antibiotic resistome in a world’s large river. Microbiome 10, 111 (2022). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- 3.Liu W., et al., Temporal dynamics and contribution of phage community to the prevalence of antibiotic resistance genes in a full-scale sludge anaerobic digestion plant. Environ. Sci. Technol. 58, 6296-6304 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- 4.Yi Liang X., et al., Giant viruses as reservoirs of antibiotic resistance genes. Nat. Commun. 15, 7536 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- 5.Shi Z., et al., Viral and bacterial community dynamics in food waste and digestate from full-scale biogas plants. Environ. Sci. Technol. 58, 13010-13022 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- 6.Hu J., et al., Characterizing the gut phageome and phage-borne antimicrobial resistance genes in pigs. Microbiome 12, 102 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- ng A., et al., Synoptic variation drives genetic diversity and transmission mode of airborne DNA viruses in urban space. Adv. Sci. 11, 2404512 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- 8.Zhang N., et al., Virus-prokaryote interactions assist pollutant removal in constructed wetlands. Bioresour. Technol. 416, 131791 (2025). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- 9.Du S., et al., Viral communities suppress the earthworm gut antibiotic resistome by lysing bacteria on a national scale. Environ. Sci. Technol. 58, 13961-13972 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- lero-Cáceres W., Ye M., Balcázar J. L., Bacteriophages as environmental reservoirs of antibiotic resistance. Trends Microbiol. 27, 570-577 (2019). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- 11.Warwick-Dugdale J., et al., Host-hijacking and planktonic piracy: How phages command the microbial high seas. Virol. J. 16, 1-13 (2019). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- 12.Luo X.-Q., et al., Viral community-wide auxiliary metabolic genes differ by lifestyles, habitats, and hosts. Microbiome 10, 190 (2022). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Effects of Salt Stress on Earthworm Function and Compost Quality During Vermicomposting of Kitchen Wastes – PMC. Bioengineering (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/bioengineering13010038 · PMID: 41595970.
- 1.Ding Y., Zhao J., Liu J.W., Zhou J., Cheng L., Zhao J., Shao Z., Iris C., Pan B., Li X. A review of China’s municipal solid waste (MSW) and comparison with international regions: Management and technologies in treatment and resource utilization. J. Clean. Prod. 2021;293:126144.1-126144.20. doi: 10.1016/j.jclepro.2021.126144. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jclepro.2021.126144.
- 2.Miao S., Wei Y., Chen J., Wei X. Extraction methods, physiological activities and high value applications of tea residue and its active components: A review. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2023;63:12150-12168. doi: 10.1080/10408398.2022.2099343. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/10408398.2022.2099343.
- 3.Wang Z., Wang S., Li H., Lu Y., Zhang B., Zhang H., Zhang S. Synergistic effects of economic benefits, resource conservation and carbon mitigation of kitchen waste recycling from the perspective of carbon neutrality. Resour. Conserv. Recy. 2023;199:11. doi: 10.1016/j.resconrec.2023.107262. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.resconrec.2023.107262.
- 4.Domínguez J., Aira M., Kolbe A.R., Gómez-Brandón M., Pérez-Losadaz M. Changes in the composition and function of bacterial communities during vermicomposting may explain beneficial properties of vermicompost. Sci. Rep. 2019;9:9657. doi: 10.1038/s41598-019-46018-w. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41598-019-46018-w.
- 5.Zhang H., Fu Z., Guan D., Zhao J., Wang Y., Zhang Q., Xie J., Sun Y., Guo L., Wang D. A comprehensive review on food waste anaerobic co-digestion: Current situation and research prospect. Process. Saf. Environ. 2023;179:546-558. doi: 10.1016/j.psep.2023.09.030. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.psep.2023.09.030.
- 6.Xia H., Huang W., Huang K., Yang R., Li T., Mao H. Effects of salt content on degradation and transformation performance of kitchen waste during vermicomposting. J. Environ. Chem. Eng. 2025;13:117884. doi: 10.1016/j.jece.2025.117884. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jece.2025.117884.
- 7.Ai F., Zheng S., Zeng C., Li B., Zhang K., Zhang C., Li Q., Kang L. Soil ecosystem multifunctionality and growth characteristics of Leymus chinensis were enhanced after sandy soil amendment with vermicompost and soil conditioner in soil-plant-microbe system. Environ. Technol. Innov. 2025;39:104226. doi: 10.1016/j.eti.2025.104226. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.eti.2025.104226.
- 8.Helmy K.G., Abu-Hussien S.H. Root Rot Management in Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Through Integrated Biocontrol Strategies using Metabolites from Trichoderma harzianum, Serratia marcescens, and Vermicompost Tea. Microb. Ecol. 2024;87:94. doi: 10.1007/s00248-024-02400-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00248-024-02400-4.
- 9.Xu X., Wang R., Guo Y., Li X., Zhu Z., Ouyang C., Zhao Y., Zhou T. Effects of exogenous additives on thermophilic co-composting of food waste digestate: Coupled response of enhanced humification and suppressed gaseous emissions. Energy Environ. Sustain. 2025;1:100046. doi: 10.1016/j.eesus.2025.100046. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.eesus.2025.100046.
- 10.Fang Z., Hodson M.E., Hu C.-J., Li W.-J., Li J., Monroy A.B., Tong L., Xiao X. Combined toxicity of polyethylene microplastics and soil salinization to earthworms is generally antagonistic or additive. J. Hazard. Mater. 2025;495:138843. doi: 10.1016/j.jhazmat.2025.138843. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jhazmat.2025.138843.
- 11.Raiesi F., Motaghian H.R., Nazarizadeh M. The sublethal lead (Pb) toxicity to the earthworm Eisenia fetida (Annelida, Oligochaeta) as affected by NaCl salinity and manure addition in a calcareous clay loam soil during an indoor mesocosm experiment. Ecotox. Environ. Saf. 2020;190:110083. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.110083. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.ecoenv.2019.110083.
- 12.Li S., Wang C., Huang H., Zhao L., Cao J., Wang B., Ding H. Vermicompost and Azotobacter chroococcum increase nitrogen retention in saline-alkali soil and nitrogen utilization of maize. Appl. Soil. Ecol. 2024;201:105512. doi: 10.1016/j.apsoil.2024.105512. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.apsoil.2024.105512.
- Plasmid-Mediated Spread of Antibiotic Resistance by Arsenic and Microplastics During Vermicomposting – PMC. Antibiotics (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/antibiotics14121230 · PMID: 41463733.
- 1.Han N.-N., Wang X.-P., Jin J.-A., Li W.-H., Yang W.-Y., Fan N.-S., Jin R.-C. Underrated risk of antibiotic resistance genes dissemination mediated by bioaerosols released from anaerobic biological wastewater treatment system. Water Res. 2025;279:123463. doi: 10.1016/j.watres.2025.123463. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.watres.2025.123463.
- stañeda-Barba S., Top E.M., Stalder T. Plasmids, a molecular cornerstone of antimicrobial resistance in the One Health era. Nat. Rev. Microbiol. 2023;22:18-32. doi: 10.1038/s41579-023-00926-x. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41579-023-00926-x.
- e Y., Yang Y., Xu X., Břinda K., Polz M.F., Hanage W.P., Zhang T. Conjugative plasmids interact with insertion sequences to shape the horizontal transfer of antimicrobial resistance genes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2021;118:e2008731118. doi: 10.1073/pnas.2008731118. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.2008731118.
- ng J., Zhang W., Zhang L., Qin C., Wang H., Ling W. Micro-interfacial behavior of antibiotic-resistant bacteria and antibiotic resistance genes in the soil environment: A review. Environ. Int. 2024;191:108972. doi: 10.1016/j.envint.2024.108972. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.envint.2024.108972.
- 5.Enebe M.C., Erasmus M. Vermicomposting technology-A perspective on vermicompost production technologies, limitations and prospects. J. Environ. Manag. 2023;345:118585. doi: 10.1016/j.jenvman.2023.118585. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jenvman.2023.118585.
- 6.Mu M., Yang F., Han B., Ding Y., Zhang K. Insights into the panorama of antibiotic resistome in cropland soils amended with vermicompost in China. Sci. Total Environ. 2023;868:161658. doi: 10.1016/j.scitotenv.2023.161658. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.scitotenv.2023.161658.
- 7.Huang K., Xia H., Zhang Y., Li J., Cui G., Li F., Bai W., Jiang Y., Wu N. Elimination of antibiotic resistance genes and human pathogenic bacteria by earthworms during vermicomposting of dewatered sludge by metagenomic analysis. Bioresour. Technol. 2020;297:122451. doi: 10.1016/j.biortech.2019.122451. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2019.122451.
- ng S., Li P., Wu Y., Tang H., Cheng S., Thunders M., Qiu J., Li Y. Eco-risk management of tylosin fermentation residues using vermicomposting. J. Environ. Manag. 2022;303:114126. doi: 10.1016/j.jenvman.2021.114126. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jenvman.2021.114126.
- 9.Li Z., Yang F., Yang M., Yan R., Zhang K. The Mechanisms of Tetracycline in Shaping Antibiotic Resistance Gene Dynamics in Earthworm Casts During Vermicomposting. Toxics. 2025;13:273. doi: 10.3390/toxics13040273. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/toxics13040273.
- 10.Tang K.H.D. Microplastics in agricultural soils in China: Sources, impacts and solutions. Environ. Pollut. 2023;322:121235. doi: 10.1016/j.envpol.2023.121235. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.envpol.2023.121235.
- 11.Yang X., Li Q., Tang Z., Zhang W., Yu G., Shen Q., Zhao F.-J. Heavy metal concentrations and arsenic speciation in animal manure composts in China. Waste Manag. 2017;64:333-339. doi: 10.1016/j.wasman.2017.03.015. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.wasman.2017.03.015.
- 12.Zhao X., Shen J.-P., Zhang L.-M., Du S., Hu H.-W., He J.-Z. Arsenic and cadmium as predominant factors shaping the distribution patterns of antibiotic resistance genes in polluted paddy soils. J. Hazard. Mater. 2020;389:121838. doi: 10.1016/j.jhazmat.2019.121838. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jhazmat.2019.121838.
- Taxonomic and Functional Dynamics of Bacterial Communities During Drift Seaweed Vermicomposting – PMC. Microorganisms. DOI: 10.3390/microorganisms13010030 · PMID: 39858798.
- 1.Paine E.R., Schmid M., Boyd P.W., Diaz-Pulido G., Hurd C.L. Rate and fate of dissolved organic carbon release by seaweeds: A missing link in the coastal ocean carbon cycle. J. Phycol. 2021;57:1375-1391. doi: 10.1111/jpy.13198. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/jpy.13198.
- 2.Illera-Vives M., Seoane Labandeira S., Fernández-Labrada M., López-Mosquera M.E. Chapter 19, Agricultural uses of seaweed. In: Torres M.D., Kraan S., Dominguez H., editors. Sustainable Seaweed Technologies. Elsevier; Amsterdam, The Netherlands: 2020. pp. 591-612. (Advances in Green and Sustainable Chemistry). [Google Scholar].
- 3.Butt K.R., Méline C., Pérès G. Marine macroalgae as food for earthworms: Growth and selection experiments across ecotypes. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2020;27:33493-33499. doi: 10.1007/s11356-020-07666-y. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11356-020-07666-y.
- 4.Pei B., Zhang Y., Liu T., Cao J., Ji H., Hu Z., Wu X., Wang F., Lu Y., Chen N., et al. Effects of seaweed fertilizer application on crops’ yield and quality in field conditions in China-a meta-analysis. PLoS ONE. 2024;19:e0307517. doi: 10.1371/journal.pone.0307517. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1371/journal.pone.0307517.
- 5.Villares R., Fernández-Lema E., López-Mosquera E. Seasonal variations in concentrations of macro- and micronutrients in three species of brown seaweed. Bot. Mar. 2013;56:49-61. doi: 10.1515/bot-2012-0114. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1515/bot-2012-0114.
- 6.Xie C., Lee Z.J., Ye S., Barrow C.J., Dunshea F.R., Suleria H.A.R. A review on seaweeds and seaweed-derived polysaccharides: Nutrition, chemistry, bioactivities, and applications. Food Rev. Int. 2024;40:1312-1347. doi: 10.1080/87559129.2023.2212055. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1080/87559129.2023.2212055.
- olu-Ajayi A.O., van der Meer I.M., van der Werf A., Karlova R. The power of seaweeds as plant biostimulants to boost crop production under abiotic stress. Plant Cell Environ. 2022;45:2537-2553. doi: 10.1111/pce.14391. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/pce.14391.
- 8.Santinon C., Ochi D., Beppu M.M., Vieira M.G.A. Chemical modifications in the structure of seaweed polysaccharides as a viable antimicrobial application: A current overview and future perspectives. Algal Res. 2022;66:102796. doi: 10.1016/j.algal.2022.102796. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.algal.2022.102796.
- 9.Dang B.-T., Ramaraj R., Huynh K.-P.-H., Le M.-V., Tomoaki I., Pham T.-T., Hoang Luan V., Thi Le Na P., Tran D.P.H. Current application of seaweed waste for composting and biochar: A review. Bioresour. Technol. 2023;375:128830. doi: 10.1016/j.biortech.2023.128830. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2023.128830.
- 10.Domínguez J. State of the art and new perspectives on vermicomposting research. In: Edwards C.A., editor. Earthworm Ecology. 2nd ed. CRC Press; Boca Ratón, FL, USA: 2004. pp. 401-442. [Google Scholar].
- 11.Patón D., García-Gómez J.C., Loring J., Torres A. Composting the invasive toxic seaweed Rugulopteryx okamurae using five invertebrate species, and a mini-review on composting macroalgae. Waste Biomass Valor. 2023;14:167-184. doi: 10.1007/s12649-022-01849-z. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s12649-022-01849-z.
- 12.Ananthavalli R., Ramadas V., John Paul J.A.J., Karunai Selvi B., Karmegam N. Seaweeds as bioresources for vermicompost production using the earthworm, Perionyx excavatus (Perrier) Bioresour. Technol. 2019;275:394-401. doi: 10.1016/j.biortech.2018.12.091. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2018.12.091.
- Bruno Nunez. Un lombricomposteur dans la cuisine, c’est possible!. 2014.
- Lombricomposteur : guide complet pour composter en appartement ou maison.
- Meilleurs Lombricomposteurs : Avis, Tests et Comparatifs 2025.
- Poêle Inox. Guide pratique pour intégrer un lombricomposteur dans votre cuisine. 2023.






