L’anthurium aime la lumière vive, la chaleur stable et un substrat qui laisse respirer ses racines. À l’inverse, le soleil direct, l’eau stagnante et les courants d’air froid transforment vite la belle plante tropicale en feuille fatiguée.
Originaire des forêts tropicales d’Amérique centrale et du Sud, l’anthurium est cultivé en pot pour son feuillage brillant et ses inflorescences colorées. Ce que l’on appelle souvent sa fleur est une spathe, une bractée épaisse qui entoure le spadice, l’épi portant les petites fleurs. Selon l’espèce et le cultivar, la plante atteint environ 50 à 60 cm, parfois davantage, et une inflorescence reste décorative de trois semaines à près de deux mois.
La floraison ne se commande pas avec une bouteille d’engrais : elle dépend d’un équilibre entre lumière, eau, racines et température.
Le salon fait sa loi, pas le plein soleil
Placez l’anthurium près d’une fenêtre très lumineuse, idéalement à l’est ou derrière un voilage. Le soleil direct, surtout à travers une vitre exposée au sud, peut brunir les feuilles et décolorer les spathes. À l’autre bout du problème, une lumière trop faible allonge les pétioles, réduit la taille des feuilles et éloigne la floraison. La plante ne boude pas par principe : elle manque simplement de carburant lumineux.
Tournez le pot de temps en temps pour éviter qu’une seule face ne se développe vers la fenêtre. Si l’anthurium cesse de fleurir, vérifiez d’abord sa distance à la source de lumière avant de modifier l’engrais. Chez Jardin-Bio, on préfère ce contrôle simple aux recettes miracles qui font surtout travailler le placard à produits.
Arroser, oui; noyer, non merci
Le substrat doit rester légèrement humide, jamais détrempé en permanence. Touchez sa surface avant d’arroser. Lorsqu’elle commence à sécher, versez de l’eau à température ambiante jusqu’à ce qu’un peu s’écoule par le fond du pot, puis videz la soucoupe ou le cache-pot.
La fréquence varie avec la taille du contenant, la composition du substrat et la température de la pièce. En été, une atmosphère chaude et lumineuse accélère le dessèchement. En hiver, le chauffage assèche l’air alors que la croissance ralentit : arroser à l’identique toute l’année serait une sacrée galère pour les racines. Une eau peu calcaire, comme une eau de pluie propre ou une eau filtrée, peut limiter les dépôts en surface, sans remplacer un bon drainage.
L’humidité ambiante aide le feuillage, mais la brumisation ne donne pas le droit de laisser les feuilles mouillées en continu. Un plateau de billes d’argile maintenu humide peut augmenter l’humidité autour de la plante, à condition que le fond du pot ne touche pas l’eau. Aérez la pièce et évitez de mouiller les spathes pendant la floraison.
Les taches, les feuilles noircies et les racines qui baignent ne se règlent pas avec davantage d’eau. Oui, même si l’anthurium vient d’une forêt humide.
Le terreau ne doit pas jouer au béton
De nombreux anthuriums poussent dans des milieux où les racines restent aérées. En pot, choisissez un substrat structuré, composé de terreau et d’écorces, avec un matériau drainant adapté. Un mélange pour orchidées peut convenir s’il ne se compacte pas. Le pot doit surtout posséder un trou de drainage : une couche de graviers ne compense pas son absence.
Un substrat tassé retient l’eau au coeur de la motte et limite l’oxygène disponible pour les racines. Lorsque l’eau s’écoule immédiatement sur les côtés ou que le terreau se rétracte en bloc, inspectez la motte. Le sol, même dans un pot, est un organisme vivant qu’on nourrit. Une motte compacte ressemble toutefois davantage à une éponge oubliée au fond d’un seau.
Au printemps, rempotez si les racines occupent tout le contenant ou si le mélange s’est dégradé. Un rempotage tous les deux ans peut convenir à une plante installée, mais l’état réel des racines doit passer avant le calendrier. Retirez seulement les parties sèches ou pourries avec un outil propre, puis installez la plante à la même hauteur qu’avant.
Ne recouvrez pas le collet d’une épaisse couche de substrat. Après l’opération, reprenez les arrosages progressivement. Le drainage ne fait pas tout, mais sans lui l’anthurium négocie mal avec l’excès d’eau.
Engrais : le bouton compte, pas la bouteille

Un engrais liquide pour plantes fleuries peut accompagner la croissance au printemps et en été, notamment de mars à septembre. La dose dépend de la formulation et de sa concentration : suivez l’étiquette au lieu d’ajouter une rasade supplémentaire parce qu’une spathe tarde à apparaître. Les sels peuvent s’accumuler dans le substrat et abîmer les racines.
La floraison dépend d’abord de la lumière, de la chaleur et de l’état racinaire. Le marc de café dilué n’est pas un engrais équilibré : sa composition varie et il ne remplace pas une fertilisation formulée pour les plantes en pot. Ce remède de cuisine apporte parfois surtout de l’humidité et des résidus. Nul besoin de jouer au petit laboratoire avec le fond de la cafetière.
Si la plante cesse de pousser en hiver, réduisez ou interrompez les apports jusqu’à la reprise. La mention bio ou naturelle d’un engrais ne corrige ni un excès de dose ni un mauvais drainage. Un produit adapté au potager n’est pas automatiquement adapté à l’anthurium.
Pour nourrir la floraison, on commence par corriger les racines et la lumière, puis on fertilise avec mesure.
Rempotage : la touffe contre-attaque
Les anthuriums âgés forment parfois des rejets périphériques. La division se réalise au moment du rempotage, lorsque chaque morceau possède des racines et un point de croissance. Séparez les rejets avec un couteau propre, installez-les dans un substrat aéré et placez-les dans une pièce chaude et lumineuse, sans soleil direct.
Pour l’entretien courant, coupez les inflorescences fanées et les feuilles jaunes à leur base avec un sécateur propre. Ne tirez pas sur les hampes sèches : elles peuvent résister et arracher une partie de la plante. Un chiffon humide suffit pour retirer la poussière du feuillage. Les produits lustrants sont inutiles et peuvent irriter les feuilles.
Inspectez aussi le revers des feuilles et les jeunes pousses. Les acariens, les cochenilles, les aleurodes et les pucerons profitent d’un air très sec. Une douche douce du feuillage peut retirer une partie des ravageurs, à condition de laisser ensuite la plante s’égoutter complètement et de ne pas détremper le coeur de la touffe.
Le froid ne négocie pas, il facture
Une température comprise entre 18 et 25 degrés convient à la croissance. Une courte baisse vers 14 à 16 degrés peut être tolérée, mais l’anthurium ralentit lorsque le froid s’installe. Une porte souvent ouverte, une fenêtre mal isolée ou une bouche d’aération peuvent donc suffire à interrompre la croissance et la floraison.
Une étude publiée en janvier 2024 dans International Journal of Molecular Sciences a comparé les réponses de deux cultivars d’Anthurium andraeanum soumis au froid. Les chercheurs ont identifié 24 695 gènes différentiellement exprimés dans les comparaisons étudiées et des réponses différentes entre le cultivar tolérant Elegang et le cultivar sensible Menghuang. Ces résultats concernent des cultivars et des conditions expérimentales précises, pas un seuil valable pour chaque pot du salon.
Le réglage le plus simple reste donc l’emplacement : éloignez la plante des courants d’air et des variations rapides. La météo du salon adore déjouer les calendriers, mais elle laisse généralement une fenêtre tranquille quelque part.
Les racines font équipe, mais pas à l’aveugle

Un article publié en 2019 dans BMC Plant Biology a étudié de jeunes Anthurium andraeanum issus de culture in vitro et colonisés par le champignon endophyte Piriformospora indica. Dans les conditions de l’expérience, les plants colonisés ont développé leurs racines plus rapidement, absorbé davantage de phosphore et présenté une activité photosynthétique plus élevée que les plants témoins.
L’étude a aussi observé une activité accrue de certaines enzymes liées au stress et des marqueurs associés à la résistance aux maladies. Cela ne transforme pas l’inoculant en solution domestique universelle. Un produit vendu en ligne ne dispense ni de chaleur, ni de lumière, ni d’un substrat correctement aéré. Le champignon a été étudié dans un protocole précis, pas dans le cache-pot de la cuisine.
Sève et ingestion : zéro improvisation
Ne préparez ni tisane, ni macération, ni extrait maison avec un anthurium. La prudence est particulièrement nécessaire pour les enfants et les animaux domestiques : gardez la plante hors de portée et lavez-vous les mains après une division ou un rempotage.
Une étude publiée le 29 août 2023 dans Toxicon a évalué des extraits solides et aqueux d’Anthurium schlechtendalii chez des rats soumis à une atteinte rénale provoquée par l’adénine. Aux doses testées, les extraits ont été associés à des dommages tubulaires et glomérulaires. L’espèce étudiée, les extraits et le modèle animal ne permettent pas d’extrapoler directement à tous les anthuriums ni à l’être humain, mais ils ne valident aucun usage médicinal improvisé.
Diagnostic : la feuille parle, mais pas toute seule

Des bords bruns peuvent venir d’un air trop sec, d’un soleil direct ou d’un courant froid. Des feuilles jaunes avec un substrat constamment humide orientent plutôt vers un excès d’eau, mais il faut aussi vérifier les racines. Des tiges qui s’allongent et une floraison absente évoquent souvent un manque de lumière. Un symptôme isolé ne suffit donc pas à choisir un traitement.
Observez dans cet ordre : l’exposition, la température, l’humidité du substrat, l’état des racines et la présence de ravageurs. Cette méthode évite de déplacer la plante trois fois dans la même journée, de changer d’engrais, puis de l’arroser encore pour faire bonne mesure.
Le voisin pourra toujours conseiller le marc de café. Les racines, elles, réclament d’abord de l’air.
Sources et références scientifiques
- Calderón-Garcidueñas AL, Barradas-Dermitz DM, Nolasco-Hipolito C, López-Amador N, Ajibola OO, Carvajal-Zarrabal O.. Functional and histological effects of Anthurium schlechtendalii Kunth extracts on adenine-induced kidney damage of adult Wistar rats.. Toxicon : official journal of the International Society on Toxinology. 2023. DOI: 10.1016/j.toxicon.2023.107272 · PMID: 37652102. (résumé scientifique structuré; texte intégral non fourni)
- Growth promotion and disease resistance induced in Anthurium colonized by the beneficial root endophyte Piriformospora indica – PMC. BMC plant biology. DOI: 10.1186/s12870-019-1649-6 · PMID: 30678653.
- 1.Teixeira da Silva JA, Dobránszki J, Winarto B, Zeng S. Anthurium in vitro: a review. Sci Hortic. 2015;186:266-298. [Google Scholar].
- 2.Elibox W, Umaharan P. Cultivar differences in the deterioration of vase-life in cut-flowers of Anthurium andraeanum is determined by mechanisms that regulate water uptake. Sci Hortic. 2010;124(1):102-108. [Google Scholar].
- 3.Varma A, Savita V, Sudha, Sahay N, Butehorn B, Franken P. Piriformospora indica, a cultivable plant-growth-promoting root endophyte. Appl Environ Microbiol. 1999;65(6):2741-2744. doi: 10.1128/aem.65.6.2741-2744.1999. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1128/aem.65.6.2741-2744.1999.
- 4.Ye W, Shen CH, Lin Y, Chen PJ, Xu X, Oelmuller R, Yeh KW, Lai Z. Growth promotion-related miRNAs in Oncidium orchid roots colonized by the endophytic fungus Piriformospora indica. PLoS One. 2014;9(1):e84920. doi: 10.1371/journal.pone.0084920. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1371/journal.pone.0084920.
- 5.Sherameti I, Shahollari B, Venus Y, Altschmied L, Varma A, Oelmuller R. The endophytic fungus Piriformospora indica stimulates the expression of nitrate reductase and the starch-degrading enzyme glucan-water dikinase in tobacco and Arabidopsis roots through a homeodomain transcription factor that binds to a conserved motif in their promoters. J Biol Chem. 2005;280(28):26241-26247. doi: 10.1074/jbc.M500447200. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1074/jbc.M500447200.
- 6.Yadav V, Kumar M, Deep DK, Kumar H, Sharma R, Tripathi T, Tuteja N, Saxena AK, Johri AK. A phosphate transporter from the root endophytic fungus Piriformospora indica plays a role in phosphate transport to the host plant. J Biol Chem. 2010;285(34):26532-26544. doi: 10.1074/jbc.M110.111021. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar] [Retracted]. doi:10.1074/jbc.M110.111021.
- 7.Bagde US, Prasad R, Varma A. Influence of culture filtrate of Piriformospora indica on growth and yield of seed oil in Helianthus annus. Symbiosis. 2011;53(2):83. [Google Scholar].
- 8.Waller F, Achatz B, Baltruschat H, Fodor J, Becker K, Fischer M, Heier T, Huckelhoven R, Neumann C, von Wettstein D, et al. The endophytic fungus Piriformospora indica reprograms barley to salt-stress tolerance, disease resistance, and higher yield. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102(38):13386-13391. doi: 10.1073/pnas.0504423102. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.0504423102.
- 9.Varma A, Sowjanya Sree K, Arora M, Bajaj R, Prasad RC, Kharkwal A. Funnctions of novel symbiotic fungus – Piriformospora Indica, vol. 80. 2014. [Google Scholar].
- 10.Banhara A, Ding Y, Kühner R, Zuccaro A, Parniske M. Colonization of root cells and plant growth promotion by Piriformospora indica occurs independently of plant common symbiosis genes. Front Plant Sci. 2015;6:667. doi: 10.3389/fpls.2015.00667. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fpls.2015.00667.
- 11.Harrach BD, Baltruschat H, Barna B, Fodor J, Kogel KH. The mutualistic fungus Piriformospora indica protects barley roots from a loss of antioxidant capacity caused by the necrotrophic pathogen Fusarium culmorum. Mol Plant-Microbe Interact. 2013;26(5):599-605. doi: 10.1094/MPMI-09-12-0216-R. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1094/MPMI-09-12-0216-R.
- 12.Gill SS, Gill R, Trivedi DK, Anjum NA, Sharma KK, Ansari MW, Ansari AA, Johri AK, Prasad R, Pereira E, et al. Piriformospora indica: potential and significance in plant stress tolerance. Front Microbiol. 2016;7:332. doi: 10.3389/fmicb.2016.00332. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fmicb.2016.00332.
- Comparative Physiological and Transcriptome Analyses of Tolerant and Susceptible Cultivars Reveal the Molecular Mechanism of Cold Tolerance in Anthurium andraeanum – PMC. International journal of molecular sciences. DOI: 10.3390/ijms25010250 · PMID: 38203421.
- 1.Theocharis A., Clement C., Barka E.A. Physiological and molecular changes in plants grown at low temperatures. Planta. 2012;235:1091-1105. doi: 10.1007/s00425-012-1641-y. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00425-012-1641-y.
- 2.Meng S., Xiang H., Yang X., Ye Y., Han L., Xu T., Liu Y., Wang F., Tan C., Qi M., et al. Effects of low temperature on pedicel abscission and auxin synthesis key genes of tomato. Int. J. Mol. Sci. 2023;24:9186. doi: 10.3390/ijms24119186. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/ijms24119186.
- 3.Andaya V.C., Mackill D.J. Mapping of QTLs associated with cold tolerance during the vegetative stage in rice. J. Exp. Bot. 2003;54:2579-2585. doi: 10.1093/jxb/erg243. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jxb/erg243.
- 4.Zuther E., Lee Y.P., Erban A., Kopka J., Hincha D.K. Natural variation in freezing tolerance and cold acclimation response in Arabidopsis thaliana and related species. Adv. Exp. Med. Biol. 2018;1081:81-98. doi: 10.1007/978-981-13-1244-1_5. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/978-981-13-1244-1_5.
- 5.Valitova J., Renkova A., Mukhitova F., Dmitrieva S., Beckett R.P., Minibayeva F.V. Membrane sterols and genes of sterol biosynthesis are involved in the response of Triticum aestivum seedlings to cold stress. Plant Physiol. Biochem. 2019;142:452-459. doi: 10.1016/j.plaphy.2019.07.026. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.plaphy.2019.07.026.
- 6.Goswami A.K., Maurya N.K., Goswami S., Bardhan K., Singh S.K., Prakash J., Pradhan S., Kumar A., Chinnusamy V., Kumar P., et al. Physio-biochemical and molecular stress regulators and their crosstalk for low-temperature stress responses in fruit crops: A review. Front. Plant Sci. 2022;13:1022167. doi: 10.3389/fpls.2022.1022167. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fpls.2022.1022167.
- 7.Wang S., Zhao H., Zhao L., Gu C., Na Y., Xie B., Cheng S., Pan G. Application of brassinolide alleviates cold stress at the booting stage of rice. J. Integ. Agric. 2020;19:975-987. doi: 10.1016/S2095-3119(19)62639-0. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/S2095-3119(19)62639-0.
- 8.Wang J., Dong S., Jiang Y., He H., Liu T., Lv M., Shi S. Influence of long-term cold storage on phenylpropanoid and soluble sugar metabolisms accompanied with peel browning of ‘Nanguo’ pears during subsequent shelf life. Sci. Hortic. 2020;260:108888. doi: 10.1016/j.scienta.2019.108888. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.scienta.2019.108888.
- 9.Pinhero R.G., Rao M.V., Paliyath G., Murr D.P., Fletcher R.A. Changes in activities of antioxidant enzymes and their relationship to genetic and paclobutrazol-induced chilling tolerance of maize seedlings. Plant Physiol. 1997;114:695-704. doi: 10.1104/pp.114.2.695. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1104/pp.114.2.695.
- 10.Zhou X., Muhammad I., Lan H., Xia C. Recent advances in the analysis of cold tolerance in maize. Front. Plant Sci. 2022;13:866034. doi: 10.3389/fpls.2022.866034. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/fpls.2022.866034.
- 11.Fernandez O., Bethencourt L., Quero A., Sangwan R.S., Clement C. Trehalose and plant stress responses: Friend or foe? Trends Plant Sci. 2010;15:409-417. doi: 10.1016/j.tplants.2010.04.004. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tplants.2010.04.004.
- 12.Lunn J.E., Delorge I., Figueroa C.M., Van Dijck P., Stitt M. Trehalose metabolism in plants. Plant J. 2014;79:544-567. doi: 10.1111/tpj.12509. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/tpj.12509.
- Grading Criteria of Anthurium DUS Quantitative Characteristics by Multiple Comparison – PMC. Plants (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/plants12132417 · PMID: 37446978.
- 1.Buanec B.L. Protection of plant-related innovations: Evolution and current discussion. World Pat. Inf. 2006;28:50-62. doi: 10.1016/j.wpi.2005.10.002. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.wpi.2005.10.002.
- 2.Jamali S.H., Cockram J., Hickey L.T. Insights on deployment of DNA markers in plant variety protection and registration. Theor. Appl. Genet. 2019;132:1911-1929. doi: 10.1007/s00122-019-03348-7. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00122-019-03348-7.
- en L., Yu F.L., Yao M.Z., Lu B., Yang K., Du Y.Y. Preparation of the UPOV guidelines for the conduct of tests for distinctness, uniformity and stability-tea plant [Camellia sinensis (L.). Kuntze] Agric. Sci. China. 2008;7:224-231. doi: 10.1016/S1671-2927(08)60043-7. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/S1671-2927(08)60043-7.
- 4.International Union for the Protection of New Varieties of Plants General Introduction to the Examination of Distinctness, Uniformity and Stability and the Development of Harmonized Descriptions of New Varieties of Plants (TG 1/3) [(accessed on 8 June 2023)]. Available online:.
- 5.Wu Q.C., Zhang D.J., Zhang Q., Zang D.K. Development of DUS test guidelines for new varieties of Viburnum L. J. For. Res. 2019;30:2313-2320. doi: 10.1007/s11676-018-0768-5. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11676-018-0768-5.
- 6.International Union for the Protection of New Varieties of Plants Glossary of Terms Used in UPOV Documents (TGP/14) [(accessed on 17 March 2023)]. Available online:.
- 7.Furones-Pérez P., Fernández-López J. Usefulness of 13 morphological and phenological characteristics of sweet chestnut (Castanea sativa Mill.) for use in the DUS test. Euphytica. 2009;167:1-21. doi: 10.1007/s10681-008-9848-5. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s10681-008-9848-5.
- 8.International Union for the Protection of New Varieties of Plants Development of Test Guidelines (TGP/7) [(accessed on 23 March 2023)]. Available online:.
- 9.Liu Y.F., Zhang J.H., Lv B., Yang X.H., Li Y.G., Wang Y., Wang J.M., Zhang H., Guan J.J. Statistic analysis on quantitative characteristics for developing the DUS test guideline of Ranunculus asiaticus L. J. Integr. Agric. 2013;12:971-978. doi: 10.1016/S2095-3119(13)60474-8. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/S2095-3119(13)60474-8.
- 10.Zhong H.F., Chen J.F., Chen Y.H., Qiu S.X., Huang M.L. Variation and probability grading of main quantitative traits of Phalaenopsis germplasm resources. Chin. J. Trop. Crops. 2020;41:1117-1123. doi: 10.3969/j.issn.1000-2561.2020.06.007. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3969/j.issn.1000-2561.2020.06.007.
- 11.Gelman A. Scaling regression inputs by dividing by two standard deviations. Statist. Med. 2008;27:2865-2873. doi: 10.1002/sim.3107. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1002/sim.3107.
- 12.Williams L.J., Abdi H. Fisher’s least significant difference (LSD) test. In: Salkind N., editor. Encyclopedia of Research Design. Sage; Thousand Oaks, CA, USA: 2010. pp. 1-6. [Google Scholar].
- Bruno Nunez. L’Anthurium, langue de feu : une belle tropicale pour intérieur coloré. 2014.
- Anthurium : tous les conseils de culture et d’entretien. 2010.
- Anthurium : rempotage, arrosage et entretien | Truffaut.
- Contributeurs aux projets Wikimedia. genre de plantes. 2004.
- [modifier | modifier le code].
- ↑ (en) « The Genus Anthurium », sur International Aroid Society..
- ↑ Wolverton, B. C. and J. D. Wolverton. (1993). Plants and soil microorganisms: removal of formaldehyde, xylene, and ammonia from the indoor environment. Journal of the Mississippi Academy of Sciences 38(2), 11-15..
- ↑ Roelof Jan Elsinga, « Comment prendre soin d'un Anthurium? Ton Anthurium est-il toxique pour les animaux domestiques? » [PDF], sur Plant care Beginners, 18 mars 2023 (consulté le 5 juin 2025).






