Sous le nom d’huître végétale se cachent deux plantes bien différentes : la mertensie maritime, récoltée pour ses feuilles iodées, et le salsifis, cultivé surtout pour sa racine. Même surnom, deux calendriers et deux façons de jardiner. Le nom, lui, nage encore en pleine confusion.
Deux huîtres, pas le même bocal
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Le terme « huître végétale » désigne le plus souvent Mertensia maritimaune petite vivace rampante aux feuilles bleu-vert et charnues. Mais « vegetable oyster » est aussi un nom courant du salsifis à feuilles de poireau, Tragopogon porrifolius. Les deux sont comestibles, mais leur ressemblance s’arrête presque au surnom.
Vivace rampante de 10 à 30 cm de haut, avec un étalement de 30 à 60 cm. Elle demande un sol sableux, très drainant et frais en été, au soleil ou à mi-ombre.
Feuilles récoltées au fur et à mesure, surtout du printemps à l’été.
Tragopogon porrifolius
Racine, jeunes pousses et fleurs
Salsifis cultivé ou présent à l’état sauvage dans les régions méditerranéennes. Il se raisonne comme une plante-racine au potager.
Racine et parties aériennes selon le stade de développement.
Une ressemblance de nom ne vaut donc pas une ressemblance de plante. Avant de commander des graines ou un plant, on vérifie le nom botanique. Cela évite d’attendre une grosse racine sur une mertensie ou de réserver un pot de bord de mer à un salsifis. La première coquille à casser, c’est celle de l’étiquette.
La mertensie, iodée mais pas noyée
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Semis au froid, patience à bord
La mertensie maritime vient de milieux côtiers. Ses tiges rampantes forment un coussin de feuilles ovales, charnues et vert bleuté. Elle apprécie un sol sableux, pauvre et très drainant, légèrement acide à neutre, qui reste frais en été sans retenir l’eau. Dans un climat frais, le plein soleil peut convenir. Dans les régions chaudes, la mi-ombre protège le feuillage du soleil brûlant.
Le semis demande une phase froide de 4 à 6 semaines avant le passage au chaud. On place les graines au réfrigérateur, puis on les sème sous abri en février, à une température comprise entre 15 et 20 °C. La levée peut prendre une quinzaine de jours et rester irrégulière. Le godet a parfois le caractère d’une huître : il ne révèle pas tout de suite ce qu’il prépare.
Le substrat doit rester humide, jamais détrempé. Les jeunes plants restent à l’abri du gel jusqu’à la remontée des températures, car les parties aériennes nouvellement sorties sont plus vulnérables que la racine. Une fois installée, la plante peut disparaître en hiver avant de repartir depuis sa souche.
Pot percé, plante sauvée
La culture en pot permet de mieux contrôler le drainage et de protéger la mertensie contre les excès de pluie. Choisissez un contenant percé et un mélange à dominante sableuse. La plante supporte mal l’eau stagnante autour des racines, surtout pendant la mauvaise saison.
Les feuilles charnues se récoltent au fur et à mesure des besoins, juste avant le repas, car elles se conservent mal. Crues, elles apportent une note iodée dans une salade ou sur une tartine. Une cuisson prolongée atténue fortement cette saveur. Les fleurs en clochettes apparaissent à la fin du printemps et pendant l’été, roses en bouton puis bleues.
Les limaces et les escargots apprécient eux aussi ce feuillage tendre. Une surveillance régulière s’impose, surtout après les pluies. La mertensie pousse lentement : un plant dévoré en deux nuits, c’est une vraie déception dans le pot.
Salsifis, racine carrée du potager
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Le salsifis à feuilles de poireau, Tragopogon porrifoliusappartient aux Astéracées. Il est cultivé ou pousse à l’état sauvage dans les régions méditerranéennes. Son usage au jardin diffère de celui de la mertensie : la récolte recherchée concerne d’abord la racine, et non un feuillage condimentaire à cueillir au fil des jours.
La racine n’est pas la seule partie décrite comme comestible. Les jeunes pousses, les feuilles et les fleurs peuvent aussi être utilisées selon le stade de la plante. Pour éviter le malentendu, on ne le conduit donc pas comme une plante à huître en pot : on lui réserve la place d’un légume-racine et on suit son développement jusqu’au moment de l’arrachage.
Le salsifis porte aussi les noms de salsifis blanc, d’« oyster plant » et de « vegetable oyster » dans la littérature anglophone. La mertensie évoque l’huître par le goût de ses feuilles. Le salsifis partage surtout un surnom alimentaire avec elle. Même coquille lexicale, pas la même assiette.
Pour choisir correctement, il faut donc associer le surnom à la partie de la plante que l’on veut récolter : la feuille pour la mertensie, la racine pour le salsifis.
Des éprouvettes, pas des promesses
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Tragopogon porrifolius a fait l’objet de travaux sur ses composés phénoliques, ses flavonoïdes et l’activité d’extraits végétaux. Ces résultats ne transforment pas le salsifis en traitement anticancer et ne donnent pas de conseil médical applicable au repas.
L’étude Hepatoprotective, Antioxidant, and Anticancer Effects of the Tragopogon porrifolius Methanolic Extractpubliée dans Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine en 2015, a testé un extrait méthanolique. Les chercheurs ont réalisé des essais in vitro sur des lignées cellulaires et une expérimentation sur des rats soumis à une intoxication hépatique provoquée par le tétrachlorure de carbone. La dose la plus élevée atteignait 250 mg d’extrait par kilogramme chez le rat.
Ces résultats décrivent donc un extrait préparé en laboratoire, des cellules et un modèle animal. Ils ne permettent pas de déduire l’effet d’une portion de salsifis consommée par une personne.
Une autre étude publiée dans Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine en 2016 a comparé des extraits aqueux, éthanoliques à 80 % et éthanoliques à 100 % de Tragopogon porrifolius récolté en Palestine. Les teneurs en composés phénoliques et plusieurs mesures d’activité antioxydante étaient les plus élevées avec l’éthanol à 80 %. Les chercheurs ont aussi observé une activité sur des lignées cellulaires d’ostéosarcome HOS et KHOS.
Un article paru dans Toxicology Reports en 2020 a étudié des extraits éthanoliques aqueux de salsifis récolté en Turquie. Les essais portaient notamment sur l’activité antioxydante, antimicrobienne et cytotoxique. Sur des cellules de cancer du sein MDA-MB-231, l’extrait de Tragopogon porrifolius présentait une IC50 de 0,0625 mg/mL. Cette valeur appartient à un test cellulaire : elle ne correspond ni à une dose alimentaire ni à une dose de soin.
Choisir sans se faire rouler dans la coquille
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Pour récolter des feuilles bleutées au goût iodé, choisissez la mertensie maritime. Installez-la dans un pot percé ou dans une terre sableuse très drainante, avec une exposition ensoleillée en climat frais et plus ombragée ailleurs. Le semis passe par 4 à 6 semaines de froid, puis par un semis sous abri autour de 15 à 20 °C.
Pour cultiver une plante-racine, choisissez le salsifis à feuilles de poireau. Vérifiez le nom botanique Tragopogon porrifoliuscar le surnom « huître végétale » peut aussi désigner cette espèce dans les catalogues et les textes anglophones.
Dans les deux cas, on ne consomme que la plante que l’on sait reconnaître avec certitude. Une étiquette confuse est agaçante. Une identification incertaine, elle, mérite surtout qu’on repose le panier.
Le nom nage, les plantes restent au clair
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La mertensie maritime donne une feuille fraîche, charnue et iodée dans un substrat bien drainé. Le salsifis donne une racine et plusieurs parties aériennes comestibles selon le stade de développement. Le premier se surveille surtout du côté de l’eau, de la chaleur et des limaces; le second se choisit pour une culture de légume-racine.
Retenez le nom botanique avant le surnom : Mertensia maritima pour la feuille au goût d’huître, Tragopogon porrifolius pour le salsifis. Après ça, la seule coquille qui reste à casser est celle du vocabulaire. Et franchement, c’est la plus facile.
Sources et références scientifiques
Anticancer Activity, Antioxidant Activity, and Phenolic and Flavonoids Content of Wild Tragopogon porrifolius Plant Extracts – PMC. Evidence-based complementary and alternative medicine : eCAM. DOI: 10.1155/2016/9612490 · PMID: 27999608.
1.Tenkerian C., El-Sibai M., Daher C. F., Mroueh M. Hepatoprotective, antioxidant, and anticancer effects of the tragopogon porrifolius methanolic extract. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2015;2015:10. doi: 10.1155/2015/161720.161720 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1155/2015/161720.161720.
2.Formisano C., Rigano D., Senatore F., Bruno M., Rosselli S. Volatile constituents of the aerial parts of white salsify (Tragopogon porrifolius L., Asteraceae) Natural Product Research. 2010;24(7):663-668. doi: 10.1080/14786410903172106. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/14786410903172106.
3.Konopiński M. Influence of intercrop plants and varied tillage on yields and nutritional value of salsify (Tragopogon porrifolius L.) roots. Acta Scientiarum Polonorum, Hortorum Cultus. 2009;8(2):27-36. [Google Scholar].
4.Özlem B. A., Gulcin S. C., Tülay Ç. Evaluation of antioxidant properties of some tragopogon species growing in Turkey. Turkish Journal of Pharmaceutical Sciences. 2013;10(3):377-384. [Google Scholar].
5.Pham-Huy L. A., He H., Pham-Huy C. Free radicals, antioxidants in disease and health. International Journal of Biomedical Science. 2008;4(2):89-96. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
6.Servili M., Montedoro G. Contribution of phenolic compounds in virgin olive oil quality. European Journal of Lipid Science and Technology. 2002;104(9-10):602-613. doi: 10.1002/1438-9312(200210)104:9/103.0.co;2-x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/1438-9312(200210)104:9/103.0.co;2-x.
7.Silva S., Gomes L., Leitão F., Coelho A. V., Boas L. V. Phenolic compounds and antioxidant activity of Olea europaea L. Fruits and leaves. Food Science and Technology International. 2006;12(5):385-396. doi: 10.1177/1082013206070166. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1177/1082013206070166.
8.Waris G., Ahsan H. Reactive oxygen species: role in the development of cancer and various chronic conditions. Journal of Carcinogenesis. 2006;5, article 14 doi: 10.1186/1477-3163-5-14. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/1477-3163-5-14.
9.Evans M. D., Dizdaroglu M., Cooke M. S. Oxidative DNA damage and disease: induction, repair and significance. Mutation Research. 2004;567(1):1-61. doi: 10.1016/j.mrrev.2003.11.001. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.mrrev.2003.11.001.
10.Prakash A., Rigelhof F., MIller E. Antioxidant Activity, World Wide Web, 2011.
11.Mojarrab M., Khan Mohammadi A., Hosseinzadeh L., Siavash-Haghighi Z. M. Antioxidant activity and safety assessment of Tragopogon buphthalmoides hydroethanolic extract: acute and subchronic toxicities. Research in Pharmaceutical Sciences. 2014;9(5):359-366. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
12.Asadi-Samani M., Kafash-Farkhad N., Azimi N., Fasihi A., Alinia-Ahandani E., Rafieian-Kopaei M. Medicinal plants with hepatoprotective activity in Iranian folk medicine. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 2015;5(2):146-157. doi: 10.1016/s2221-1691(15)30159-3. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/s2221-1691(15)30159-3.
Determination of biological activity of Tragopogon porrifolius and Polygonum cognatum consumed intensively by people in Sivas – PMC. Toxicology reports. DOI: 10.1016/j.toxrep.2019.12.002 · PMID: 31879598.
1.Novak S.J., Soltis D.E., Soltis P.S. Ownbey’s Tragopogons: 40 years later. Am. J. Bot. 1991;78(11):1586-1599. [Google Scholar].
2.Tenkerian C.A. Lebanese American University, Master in Molecular Biology; 2011. Anticancer and Antioxidant Effects of Tragopogon porrifolius Extract. [Google Scholar].
3.Zidorn C., Lohwasser U., Pschorr S., Salvenmoser D., Ongania K.H., Ellmerer E.P., Stuppner H. Bibenzyls and dihydroisocoumarins from white salsify (Tragopogon porrifolius subsp. porrifolius) Phytochemistry. 2005;66(14):1691-1697. doi: 10.1016/j.phytochem.2005.05.004. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.phytochem.2005.05.004.
4.Gupta K., Talwar G., Jain V., Dhawan K., Jain S. Salad crops: root, bulb, and tuber crops. Encycl. Food Sci. 2000;2000:5060-5073. [Google Scholar].
5.Ozlem B.A., Gulcin S.C., Tulay C. Evaluation of antioxidant properties of some Tragopogon species growing in Turkey. Turk. J. Pharm. Sci. 2013;10(3):377-384. [Google Scholar].
6.Konopinski M. Influence of intercrop plants and varied tillage on yields and nutritional value of salsify (Tragopogon porrifolius L.) roots. Acta Scı. Pol-Hortorum Cultus. 2009;8(2):27-36. [Google Scholar].
7.Formisano C., Rigano D., Senatore F., Bruno M., Rosselli S. Volatile constituents of the aerial parts of white salsify (Tragopogon porrifolius L., Asteraceae) Nat. Prod. Res. 2010;24(7):663-668. doi: 10.1080/14786410903172106. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/14786410903172106.
8.Sareedenchai V., Ganzera M., Ellmerer E.P., Lohwasser U., Zidorn C. Phenolic compounds from Tragopogon porrifolius L. Biochem. Syst. Ecol. 2009;37(3):234-236. [Google Scholar].
9.Yıldırım A., Mavi A., Kara A. Antioxidant and antimicrobial activities of Polygonum cognatum Meissn extracts. J. Sci. Food Agric. 2003;83(1):64-69. [Google Scholar].
10.Yılmaz H.Ş., Kaplan M., Kokten K. Determination of the nutritive value of some weed species. Turk. J. Agric. Nat. Sci. 2015;2(4):320-323. [Google Scholar].
11.Onen H., Altuntaş E., Özgöz E., Bayram M., Özcan S. Moisture Effect on Physical Properties of Knotweed (Polygonum cognatumMeissn.) seeds. J. Agric. Fac. Gaziosmanpasa Univ. 2014;31(2):15-24. [Google Scholar].
12.Onen H., Yılar M., Kaya C. Phenoleic composition of madimak (polygonum cognatum meissn.) Plants. 3rd Plant Protection Congress; Van, Turkey; 2009. Abstract Book Page 275. [Google Scholar].
Hepatoprotective, Antioxidant, and Anticancer Effects of the Tragopogon porrifolius Methanolic Extract – PMC. Evidence-based complementary and alternative medicine : eCAM. DOI: 10.1155/2015/161720 · PMID: 25694787.
1.Halliwell B., Gutteridge J. Free Radicals in Biology and Medicine. 4th. Oxford, UK: Clarendon Press; 2006. Antioxidant defenses endogenous and diet derived. [Google Scholar].
2.Waris G., Ahsan H. Reactive oxygen species: role in the development of cancer and various chronic conditions. Journal of Carcinogenesis. 2006;5, article 14 doi: 10.1186/1477-3163-5-14. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/1477-3163-5-14.
3.Evans M. D., Dizdaroglu M., Cooke M. S. Oxidative DNA damage and disease: induction, repair and significance. Mutation Research. 2004;567(1):1-61. doi: 10.1016/j.mrrev.2003.11.001. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.mrrev.2003.11.001.
4.Manda G., Nechifor M. T., Neagu T.-M. Reactive oxygen species, cancer and anti-cancer therapies. Current Chemical Biology. 2009;3(1):22-46. doi: 10.2174/2212796810903010022. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2174/2212796810903010022.
5.World Health Organization. Traditional Medicine, 2009..
6.Fabricant D. S., Farnsworth N. R. The value of plants used in traditional medicine for drug discovery. Environmental Health Perspectives. 2001;109(1):69-75. doi: 10.1289/ehp.01109s169. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1289/ehp.01109s169.
7.Ma J. K.-C., Chikwamba R., Sparrow P., Fischer R., Mahoney R., Twyman R. M. Plant-derived pharmaceuticals, the road forward. Trends in Plant Science. 2005;10(12):580-585. doi: 10.1016/j.tplants.2005.10.009. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tplants.2005.10.009.
8.Gupta K., Talwar G., Jain V., Dhawan K., Jain S. Salad crops root, bulb, and tuber crops. Encyclopaedia of Food Science. 2000:5060-5073. [Google Scholar].
9.Formisano C., Rigano D., Senatore F., Bruno M., Rosselli S. Volatile constituents of the aerial parts of white salsify (Tragopogon porrifolius L., Asteraceae) Natural Product Research. 2010;24(7):663-668. doi: 10.1080/14786410903172106. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/14786410903172106.
10.Zeeni N., Daher C. F., Saab L., Mroueh M. Tragopogon porrifolius improves serum lipid profile and increases short-term satiety in rats. Appetite. 2014;72:1-7. doi: 10.1016/j.appet.2013.09.023. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.appet.2013.09.023.
11.Hariri E. H., El Asmar M., Demirdjian S. A., Daher C. F., Mroueh M. A. Anti-inflammatory effect of the methanol, ethyl acetate and chloroform extracts of Tragopogon porrifolius aerial parts. Planta Medica. 2013;79(13) doi: 10.1055/s-0033-1352410. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1055/s-0033-1352410.
12.Singleton V., Rossi J. A. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. 1965;16:144-158. [Google Scholar].
Transcriptional Silencing of 35S rDNA in Tragopogon porrifolius Correlates with Cytosine Methylation in Sequence-Specific Manner – PMC. International journal of molecular sciences. DOI: 10.3390/ijms25147540 · PMID: 39062783.
1.Garcia S., Kovarik A., Leitch A.R., Garnatje T. Cytogenetic features of rRNA genes across land plants: Analysis of the Plant rDNA database. Plant J. 2017;89:1020-1030. doi: 10.1111/tpj.13442. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/tpj.13442.
2.Rosato M., Kovarik A., Garilleti R., Rossello J.A. Conserved Organisation of 45S rDNA Sites and rDNA Gene Copy Number among Major Clades of Early Land Plants. PLoS ONE. 2016;11:e0162544. doi: 10.1371/journal.pone.0162544. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1371/journal.pone.0162544.
3.Kobayashi T. A new role of the rDNA and nucleolus in the nucleus-rDNA instability maintains genome integrity. Bioessays. 2008;30:267-272. doi: 10.1002/bies.20723. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1002/bies.20723.
5.Sims J., Copenhaver G.P., Schlogelhofer P. Meiotic DNA Repair in the Nucleolus Employs a Nonhomologous End-Joining Mechanism. Plant Cell. 2019;31:2259-2275. doi: 10.1105/tpc.19.00367. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1105/tpc.19.00367.
6.Tsang E., Carr A.M. Replication fork arrest, recombination and the maintenance of ribosomal DNA stability. DNA Repair. 2008;7:1613-1623. doi: 10.1016/j.dnarep.2008.06.010. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.dnarep.2008.06.010.
7.Long Q., Rabanal F.A., Meng D.Z., Huber C.D., Farlow A., Platzer A., Zhang Q.R., Vilhjalmsson B.J., Korte A., Nizhynska V., et al. Massive genomic variation and strong selection in Arabidopsis thaliana lines from Sweden. Nat. Genet. 2013;45:884-890. doi: 10.1038/ng.2678. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/ng.2678.
8.Waters E.R., Schaal B.A. Heat shock induces a loss of rRNA-encoding DNA repeats in Brassica nigra. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996;93:1449-1452. doi: 10.1073/pnas.93.4.1449. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.93.4.1449.
9.Kobayashi T. Regulation of ribosomal RNA gene copy number and its role in modulating genome integrity and evolutionary adaptability in yeast. Cell. Mol. Life Sci. 2011;68:1395-1403. doi: 10.1007/s00018-010-0613-2. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00018-010-0613-2.
11.Ganley A.R.D., Kobayashi T. Highly efficient concerted evolution in the ribosomal DNA repeats: Total rDNA repeat variation revealed by whole-genome shotgun sequence data. Genome Res. 2007;17:184-191. doi: 10.1101/gr.5457707. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1101/gr.5457707.
12.Copenhaver G.P., Pikaard C.S. Two-dimensional RFLP analyses reveal megabase-sized clusters of rRNA gene variants in Arabidopsis thaliana, suggesting local spreading of variants as the mode for gene homogenization during concerted evolution. Plant J. 1996;9:273-282. doi: 10.1046/j.1365-313X.1996.09020273.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1046/j.1365-313X.1996.09020273.x.
Bruno Nunez. L’huître végétale : Une plante aux feuilles iodées, surprenante et délicieuse. 2020.
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.
