Un plant de salade coupé au collet, une pomme de terre perforée, un semis qui disparaît par plaques : les taupins savent mettre l’ambiance au potager. Le piège à pomme de terre aide à les repérer, mais il ne règle pas à lui seul une infestation installée.
Taupin, tau pas vu : le ver fil de fer sous la loupe
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Le ver fil de fer n’est pas un ver. C’est la larve d’un petit coléoptère de la famille des Elateridae, appelé taupin. Jaune à brun clair, allongée et rigide, elle porte trois paires de pattes regroupées près de la tête. Elle vit dans le sol et s’attaque aux graines, aux jeunes plants, aux racines et aux tubercules.
Le problème ne se règle pas en une semaine. Pour Melanotus communisune espèce étudiée dans l’est des Etats-Unis, l’article publié en 2022 dans Journal of Nematology indique une vie larvaire souterraine de 2 à 6 ans. Cette durée varie selon l’espèce et les conditions du milieu, mais elle explique pourquoi une planche peut rester exposée plusieurs saisons.
Dans les champs cultivés européens, les taupins les plus courants appartiennent au genre Agriotes. L’article publié en 2021 dans InsectsSpecies Identification of Wireworms of Agricultural Importance in Europerappelle que les seuils de dégâts varient selon l’espèce. Son tableau d’identification devient fiable lorsque plusieurs caractères discriminants, au moins deux dans la démarche décrite, conduisent à la même espèce.
Une larve trouvée dans une motte ne suffit donc pas à prévoir une récolte ratée. Il faut distinguer la présence, la densité et les dégâts observés. Le taupin adore ce flou diagnostique. Pratique, pour lui.
Avant de modifier le sol ou de choisir une méthode de lutte, identifiez la larve et mesurez sa présence à plusieurs endroits.
Pomme de terre : le piège à patate passe au diagnostic
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Une pomme de terre coupée en deux fournit un appât simple pour surveiller une planche. Les larves recherchent les tissus souterrains riches en eau et peuvent se concentrer autour du morceau enterré. Le piège répond à une question précise : des larves actives fréquentent-elles encore cet endroit?
Coupez une pomme de terre en deux et placez la face coupée contre le sol, en l’enterrant légèrement.
Repérez l’emplacement avec une étiquette ou un petit bâton.
Contrôlez l’appât chaque jour ou tous les deux jours, retirez les larves visibles et remplacez la pomme de terre lorsqu’elle se dessèche.
Répétez le contrôle à plusieurs endroits de la parcelle pour éviter de tirer une conclusion à partir d’un seul point.
Un piège vide ne prouve pas l’absence totale de taupins. Leur habitat souterrain rend l’observation partielle, et la répartition des larves peut varier d’une zone à l’autre. Plusieurs appâts donnent donc une information plus solide qu’une seule pomme de terre oubliée sous une salade.
La griffe peut aussi faire remonter quelques larves dans une planche vide. On les retire alors à la main, sans retourner toute la parcelle. La revue Insects publiée en 2022 rappelle que certaines pratiques de lutte contre les ravageurs souterrains peuvent perturber la rhizosphère, la zone où les racines, le sol et les organismes souterrains interagissent.
Le bon piège est d’abord un outil de diagnostic, pas un insecticide miniature.
Rotation des cultures : le taupin change de refrain
Avec une larve qui reste plusieurs années dans le sol, remettre chaque saison la même culture sensible au même endroit entretient le problème. Déplacer les pommes de terre, les carottes, les salades et les autres légumes à racines ou à tubercules réduit la continuité alimentaire disponible sur une planche.
Dans les faits, on commence par noter les planches, les cultures et leur famille botanique. Ce relevé permet de déplacer les cultures sensibles au fil des saisons et d’éviter une succession de pommes de terre au même emplacement. Il ne fait pas disparaître les taupins, mais il empêche de confondre rotation et recette expéditive.
Un engrais vert peut entrer dans ce calendrier lorsque la parcelle reste libre entre deux cultures. Il couvre le sol et fournit de la matière organique, sans devenir pour autant un répulsif automatique. La revue scientifique Integrated Pest Management of Wireworms and the Rhizosphere in Agroecosystemspubliée dans Insects en 2022, souligne que les changements de plantes et de pratiques modifient aussi les interactions microbiennes de la rhizosphère.
Cette approche demande de prévoir les semis, les récoltesl’eau et la place disponible. Moins spectaculaire qu’un flacon qui promet de régler le problème, certes. Mais le potager bio travaille avec un ravageur au cycle long, pas avec une panne de cafetière.
La rotation agit sur la continuité du système, pas comme un insecticide lent.
Nématodes et champignons : le bio sans baguette magique
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Les nématodes entomopathogènes et certains champignons du sol sont étudiés contre les larves de taupins. Le principe est documenté : des organismes peuvent infecter des insectes souterrains. Le passage d’un essai à une planche de légumes reste toutefois une autre histoire.
L’étude publiée en 2022 dans Journal of Nematology a testé cinq espèces ou souches de nématodes et deux champignons sur des larves de Melanotus communis. Aucun agent n’a provoqué plus de 15 % de mortalité après 7 ou 14 jours. Steinernema carpocapsae a obtenu le taux le plus élevé du groupe, sans dépasser ce seuil. Les petites larves se sont montrées plus sensibles que les grandes.
Ce résultat concerne une espèce et les agents testés dans cette étude. Il ne permet pas de conclure que tous les nématodes ou tous les champignons sont inefficaces, pas plus qu’il ne permet de prédire leur résultat sur les Agriotes d’un potager français. Le nom d’un organisme biologique ne suffit pas à garantir son adéquation à l’espèce, à la taille de la larve ou au sol.
La publication de 2021 dans MycoKeysconsacrée à la diversité de Cordyceps sensu lato sur les larves appelées vers fil de fer, recense 63 espèces signalées comme pathogènes. Parmi elles, 60 sont retenues comme pathogènes naturels et trois sont exclues. Ce travail est taxonomique et écologique : il ne constitue pas un essai d’efficacité au potager.
Un champignon présent sur une larve n’est pas encore une méthode de traitement prête à l’emploi.
Salade en rade : éviter le bal des confusions
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Une salade qui dépérit n’accuse pas forcément un taupin. La première étape consiste à chercher la larve dans le sol et à observer sa forme, plutôt qu’à choisir une méthode sur la seule apparence du dégât. Le ver fil de fer est jaune à brun clair, allongé, rigide et porte ses pattes près de la tête.
La confusion existe aussi avec des larves proches des Tenebrionoidea, parfois appelées vers fil de fer dans la pratique. La publication de 2021 dans MycoKeys rappelle que ces larves ressemblent aux larves d’Elateridae, ce qui complique le tri sur le terrain. Une photo nette et plusieurs caractères observés valent mieux qu’un diagnostic lancé entre deux arrosages.
La durée de vie souterraine explique également pourquoi un dégât découvert cette saison peut venir d’une population installée auparavant. Le piège à pomme de terre aide à vérifier la présence actuelle, la rotation organise les cultures sur plusieurs saisons et l’identification évite de traiter le mauvais adversaire.
On a tous envie d’un appât qui fasse le travail pendant qu’on boit le café. Pour les taupins, il faudra encore relever le piège. Même le voisin qui promet une planche nette devra montrer ses observations, sinon son conseil sonne creux.
Sources et références scientifiques
Integrated Pest Management of Wireworms (Coleoptera: Elateridae) and the Rhizosphere in Agroecosystems – PMC. Insects. DOI: 10.3390/insects13090769 · PMID: 36135470.
1.Vernon R.S., van Herk W.G. Insect Pests of Potato: Global Perspectives on Biology and Management. Academic Press; Cambridge, MA, USA: Elsevier; Amsterdam, The Netherlands: 2013. Wireworms as Pests of Potato; pp. 103-164. [Google Scholar].
2.Traugott M., Benefer C.M., Blackshaw R.P., van Herk W.G., Vernon R.S. Biology, Ecology, and Control of Elaterid Beetles in Agricultural Land. Annu. Rev. Entomol. 2015;60:313-334. doi: 10.1146/annurev-ento-010814-021035. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1146/annurev-ento-010814-021035.
3.Blackshaw R.P., Vernon R.S. Spatial Relationships between Two Agriotes Click-Beetle Species and Wireworms in Agricultural Fields. Agric. For. Entomol. 2008;10:1-11. doi: 10.1111/j.1461-9563.2007.00351.x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1461-9563.2007.00351.x.
4.Gough H.C., Evans A.C. Some Notes on the Biology of the Click Beetles Agriotes obscurus L. and A. sputator L. Ann. Appl. Biol. 1942;29:275-279. doi: 10.1111/j.1744-7348.1942.tb07594.x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1744-7348.1942.tb07594.x.
5.Furlan L. The Biology of Agriotes ustulatus Schäller (Col., Elateridae). II. Larval Development, Pupation, Whole Cycle Description and Practical Implications. J. Appl. Entomol. 1998;122:71-78. doi: 10.1111/j.1439-0418.1998.tb01464.x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1439-0418.1998.tb01464.x.
6.Traugott M., Schallhart N., Kaufmann R., Juen A. The Feeding Ecology of Elaterid Larvae in Central European Arable Land: New Perspectives Based on Naturally Occurring Stable Isotopes. Soil Biol. Biochem. 2008;40:342-349. doi: 10.1016/j.soilbio.2007.08.013. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.soilbio.2007.08.013.
7.Parker W.E., Howard J.J. The Biology and Management of Wireworms (Agriotes spp.) on Potato with Particular Reference to the U.K. Agric. For. Entomol. 2001;3:85-98. doi: 10.1046/j.1461-9563.2001.00094.x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1046/j.1461-9563.2001.00094.x.
8.Jansson R.K., Seal D.R. Proceedings of the International Conference on Potato. APS Press; St.Paul, MN, USA: Jakson Hole, WY, USA: 1994. Biology and Management of Wireworm on Potato; pp. 31-53. [Google Scholar].
9.Vernon R.S., Van Herk W.G., Clodius M., Harding C. Wireworm Management I: Stand Protection versus Wireworm Mortality with Wheat Seed Treatments. J. Econ. Entomol. 2009;102:2126-2136. doi: 10.1603/029.102.0616. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1603/029.102.0616.
10.Vernon R.S., van Herk W.G., Clodius M., Harding C. Crop Protection and Mortality of Agriotes obscurus Wireworms with Blended Insecticidal Wheat Seed Treatments. J. Pest Sci. 2013;86:137-150. doi: 10.1007/s10340-011-0392-z. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s10340-011-0392-z.
11.Vernon R.S., Van Herk W., Tolman J., Ortiz Saavedra H., Clodius M., Gage B. Transitional Sublethal and Lethal Effects of Insecticides after Dermal Exposures to Five Economic Species of Wireworms (Coleoptera: Elateridae) J. Econ. Entomol. 2008;101:365-374. doi: 10.1093/jee/101.2.365. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jee/101.2.365.
12.Stern V.M., Smith R.F., van den Bosch R., Hagen K.S. The Integrated Control Concept. Hilgardia. 1959;29:81-101. doi: 10.3733/hilg.v29n02p081. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3733/hilg.v29n02p081.
Species Identification of Wireworms (Agriotes spp.; Coleoptera: Elateridae) of Agricultural Importance in Europe: A New “Horizontal Identification Table” – PMC. Insects. DOI: 10.3390/insects12060534 · PMID: 34201325.
1.Veres A., Wyckhuys K.A., Kiss J., Tóth F., Burgio G., Pons X., Avilla C., Vidal S., Razinger J., Bazok R., et al. An update of the Worldwide Integrated Assessment (WIA) on systemic pesticides. Part 4: Alternatives in major cropping systems. Environ. Sci. Pollut. Res. 2020;27:29867-29899. doi: 10.1007/s11356-020-09279-x. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11356-020-09279-x.
2.Furlan L., Tóth M. Occurrence of click beetle pest spp. (Coleoptera, Elateridae) in Europe as detected by pheromone traps: Survey results of 1998-2006. IOBC/WPRS Bull. 2007;30:19-25. [Google Scholar].
3.Parker W.E., Howard J.J. The biology and management of wireworms (Agriotes spp.) on potato with particular reference to the U.K. Agric. For. Entomol. 2001;3:85-98. doi: 10.1046/j.1461-9563.2001.00094.x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1046/j.1461-9563.2001.00094.x.
4.Lehmhus J., Niepold F. New finds of the click beetle Agriotes sordidus (Illiger, 1807) and an overview on its current distribution in Germany. J. Kult. 2013;65:309-314. doi: 10.5073/JfK.2013.08.02. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.5073/JfK.2013.08.02.
5.Furlan L., Curto G., Ferrari R., Boriani L., Bourlot G., Turchi A. Wireworm species damaging crops in Po Valley (Le specie di elateridi dannose alle colture agrarie nella Pianura Padana) Inf. Fitopatol. 2000;5:53-59. [Google Scholar].
6.Furlan L., Di Bernardo A., Maini S., Ferrari R., Boriani L., Boriani M., Nobili P., Bourlot G., Turchi A., Vacante V., et al. First practical results of click beetle trapping with pheromone traps in Italy; Proceedings of the XXI IWGO Conference; Legnaro, Italy. 27 October-3 November 2001; pp. 277-282. [Google Scholar].
7.Cocquempot C., Martinez M., Courbon R., Blanchet A., Caruhel P. Nouvelles donnees sur l’identification des larves de taupins (Coleoptera: Elateridae): Une aide a la connaissance biologique et a la cartographie des especes nuisibles; Proceedings of the Cinquieme Conference INTERNATIONALE sur le Ravageurs en Agriculture; Montpellier, Paris, France. 7-9 December 1999; pp. 477-486. [Google Scholar].
8.Furlan L., Contiero B., Chiarini F., Colauzzi M., Sartori E., Benvegnù I., Fracasso F., Giandon P. Risk assessment of maize damage by wireworms (Coleoptera: Elateridae) as the first step in implementing IPM and in reducing the environmental impact of soil insecticides. Environ. Sci. Pollut. Res. 2017;24:236-251. doi: 10.1007/s11356-016-7692-z. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11356-016-7692-z.
9.Furlan L., Tóth M., Yatsinin V., Ujvary I. The project to implement IPM strategies against Agriotes species in Europe: What has been done and what is still to be done; Proceedings of the XXI IWGO Conference; Legnaro, Italia. 27 October-3 November 2001; pp. 253-262. [Google Scholar].
10.Furlan L., Tóth M., Parker W.E., Ivezić M., Pančić S., Brmez M., Dobrinĉić R., Barĉić J.I., Muresan F., Subchev M., et al. The efficacy of the new Agriotes sex pheromone traps in detecting wireworm population levels in different European countries; Proceedings of the XXI IWGO; Legnaro, Italia. 27 October-3 November 2001; pp. 293-303. [Google Scholar].
11.Masler V. Skodlivé druhy kovácikovitych (Coleoptera, Elateridae) na Slovensku a ochrana proti nim. Polnohospodárska Veda. 1982;3:126. [Google Scholar].
12.Gomboc S., Milevoj L., Furlan L., Tóth M., Bitenc P., Bobnar A., Celar F. Two-years of monitoring Click Beetles and Wireworms in Slovenia; Proceedings of the XXI WGO Conference; Legnaro, Italy. 27 October-3 November 2001; pp. 283-292. [Google Scholar].
Novel taxa and species diversity of Cordyceps sensu lato (Hypocreales, Ascomycota) developing on wireworms (Elateroidea and Tenebrionoidea, Coleoptera) – PMC. MycoKeys. DOI: 10.3897/mycokeys.78.61836 · PMID: 33854402.
Zha L-S, Kryukov VY, Ding J-H, Jeewon R, Chomnunti P (2021) Novel taxa and species diversity of Cordyceps sensu lato (Hypocreales, Ascomycota) developing on wireworms (Elateroidea and Tenebrionoidea, Coleoptera). MycoKeys 78: 79-117.. doi:10.3897/mycokeys.78.61836.
Antonelli A, Fry C, Smith RJ. (2020) State of the World’s Plants and Fungi 2020. Royal Botanic Gardens, Kew. 10.34885/172 [DOI]. doi:10.34885/172.
Bamisile BS, Dash CK, Akutse KS, Keppanan R, Afolabi OG, Hussain M, Qasim M, Wang L. (2018) Prospects of endophytic fungal entomopathogens as biocontrol and plant growth promoting agents: an insight on how artificial inoculation methods affect endophytic colonization of host plants. Microbiological Research 217: 34-50. 10.1016/j.micres.2018.08.016 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.micres.2018.08.016.
Ban S, Sakane T, Toyama K, Nakagiri A. (2009) Teleomorph-anamorph relationships and reclassification of Cordyceps cuboidea and its allied species. Mycoscience 50: 261-272. 10.1007/S10267-008-0480-Y [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/S10267-008-0480-Y.
Ban S, Sakane T, Nakagiri A. (2015) Three new species of Ophiocordyceps and overview of anamorph types in the genus and the family Ophiocordyceptaceae. Mycological Progress 14(1): 1017-1028. 10.1007/s11557-014-1017-8 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11557-014-1017-8.
Barsics F, Haubruge E, Verheggen FJ. (2013) Wireworms’ management: an overview of the existing methods, with particular regards to Agriotes spp. (Coleoptera: Elateridae). Insects 4: 117-152. 10.3390/insects4010117 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/insects4010117.
Bischoff JF, Rehner SA, Humber RA. (2009) A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia 101(4): 512-530. 10.3852/07-202 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3852/07-202.
Brunner-Mendoza C, Reyes-Montes MDR, Moonjely S, Bidochka MJ, Toriello C. (2019) A review on the genus Metarhizium as an entomopathogenic microbial biocontrol agent with emphasis on its use and utility in Mexico. Biocontrol Science and Technology 29(1): 83-102. 10.1080/09583157.2018.1531111 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1080/09583157.2018.1531111.
Cai L, Jeewon R, Hyde KD. (2006) Molecular systematics of Zopfiella and allied genera: evidence from multigene sequence analyses. Mycological Research 110: 359-368. 10.1016/j.mycres.2006.01.007 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.mycres.2006.01.007.
Catalogue of Life (2021) [accessed 1 March 2021].
Chaverri P, Bischoff JF, Evans HC, Hodge KT. (2005) Regiocrella, a new entomopathogenic genus with a pycnidial anamorph and its phylogenetic placement in the Clavicipitaceae. Mycologia 97(6): 1225-1237. 10.1080/15572536.2006.11832732 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/15572536.2006.11832732.
Cheek M, Lughadha EN, Kirk P, Lindon H, Carretero J, Looney B, Douglas B, Haelewaters D, Gaya E, Llewellyn T, Ainsworth AM, Gafforov Y, Hyde K, Crous P, Hughes M, Walker BE, Forzza RC, Wong KM, Niskanen T. (2020) New scientific discoveries: Plants and fungi. Plants, People, Planet 2(5): 371-388. 10.1002/ppp3.10148 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/ppp3.10148.
Effect of Host Size on Susceptibility of Melanotus Communis (Coleoptera: Elateridae) Wireworms to Entomopathogens – PMC. Journal of nematology. DOI: 10.2478/jofnem-2022-0033 · PMID: 36338427.
Ansari M. A., Evans M., Butt T. M.. Identification of pathogenic strains of entomopathogenic nematodes and fungi for wireworm control. Crop Protection. 2009;28:269-272. [Google Scholar].
Bastidas B., Portillo E., San-Blas E.. Size does matter: The life cycle of Steinernema spp. in micro-insect hosts. Journal of Invertebrate Pathology. 2014;121:46-55. doi: 10.1016/j.jip.2014.06.010. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jip.2014.06.010.
Brandl M. A., Schumann M., Przyklenk M., Patel A., Vidal S.. Wireworm damage reduction in potatoes with an attract-and-kill strategy using Metarhizium brunneum. Journal of Pest Science. 2017;90:479-493. [Google Scholar].
Campos-Herrera R., Gutiérrez C.. Screening Spanish isolates of steinernematid nematodes for use as biological control agents through laboratory and greenhouse microcosm studies. Journal of Invertebrate Pathology. 2009;100:100-105. doi: 10.1016/j.jip.2008.11.009. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jip.2008.11.009.
Cherry R. H., Hall D. G.. Flight activity of Melanotus communis (Coleoptera: Elateridae) in Florida sugarcane fields. Journal of Economic Entomology. 1986;79:787-789. [Google Scholar].
Cherry R., Nuessly G.. Repellency of the biopesticide, azadirachtin, to wireworms (Coleoptera: Elateridae) Florida Entomologist. 2010;93:52-55. [Google Scholar].
Cherry R., Sandhu H.. Effect of tillage practices on soil insect pests of Florida sugarcane. Journal of Entomological Science. 2020;55:295-299. [Google Scholar].
Cherry R., Stansly P.. Abundance and spatial distribution of wireworms (Coleoptera: Elateridae) in Florida sugarcane fields on muck versus sandy soils. Florida Entomologist. 2008;91:383-387. [Google Scholar].
Eidt D. C., Thurston G. S.. Physical deterrents to infection by entomopathogenic nematodes in wireworms (Coleoptera: Elateridae) and other soil insects. Canadian Entomologist. 1995;127:423-429. [Google Scholar].
Fenton F. A.. Observations on the biology of Melanotus communis and Melanotus pilosus. Journal of Economic Entomology. 1926;19:502-504. [Google Scholar].
Gill H., Chahil G., Goyal G., Gillett-Kaufman J., Cherry R. Corn wireworm Melanotus communis Gyllenhal (Insecta: Coleoptera: Elateridae). EENY584, IFAS Extension. University of Florida; 2014. 8 pages. [Google Scholar].
Grewal P. S., Georgis R. Hall F. R., Menn J. J. Methods in biotechnology, biopesticides: Use and delivery, vol 5. Totowa: Humana Press; 1998. Entomopathogenic nematodes; pp. 271-297. [Google Scholar].
Bruno Nunez. Qui sont ces vers fil de fer qui saccagent les salades?. 2019.
La rédaction de Rustica.fr. Remèdes de grand-mère contre les taupins : astuces et solutions naturelles. 2011.
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.
