Entre décembre et mars, Hamamelis mollis fleurit sur ses branches nues, quand le jardin semble avoir rangé ses outils. Quelques mois plus tard, ses capsules sèches expulsent deux graines à plusieurs mètres : l’arbuste ne manque pas de ressort.
L’hamamélis de Chine, aussi appelé noisetier des sorcières, est un arbuste caduc de la famille des Hamamelidaceae, originaire de Chine centrale et orientale. Dans son aire naturelle, il peut atteindre 8 m de hauteur. Au jardin, sa croissance lente conduit plutôt à un arbuste adulte de 2 à 3 m, avec un port buissonnant et évasé.
Ses feuilles ovales mesurent environ 8 à 15 cm de long. Elles sont vertes et velues, puis prennent des teintes jaunes en automne avant de tomber. Les fleurs jaunes, parfois rouges à la base, portent quatre pétales en lanières d’environ 15 mm. Réunies en groupes sur les rameaux nus, elles dégagent un parfum plus ou moins marqué selon le cultivar, souvent plus net au soleil. Pas franchement discret pour un arbuste sans feuilles.
Un hiver à fleurs, pas à noisettes
Hamamelis mollis est largement cultivé comme arbuste ornemental pour sa floraison hivernale, période où les floraisons sont moins nombreuses au jardin. Les fleurs apparaissent généralement de décembre à mars et restent ouvertes pendant trois semaines à un mois, selon le climat et la variété.
Pour l’installer, choisissez une situation à l’ombre légère ou à mi-ombre, notamment sous le couvert d’un arbre caduc. Le sol doit rester frais en été, être léger et humifère, avec une préférence pour les terrains acides. Une bonne terre de jardin non calcaire peut aussi convenir, même si elle est sableuse, à condition de ne pas se dessécher durablement.
Les sols calcaires, compacts ou gorgés d’eau compliquent son installation. La rusticité annoncée pour l’hamamélis de Chine et les hybrides Hamamelis × intermedia se situe autour de -20 à -25 °C, mais cette indication ne résume pas les effets du vent, de l’humidité stagnante ou d’une plantation récente. La météo, elle, adore déjouer les calendriers.
Planter sans se planter
Octobre à mars, le créneau ne chôme pas
La plantation se fait du milieu de l’automne à la fin de l’hiver, en dehors des périodes de gel. Cette fenêtre laisse à l’arbuste le temps d’émettre des racines avant les épisodes chauds et secs. Le bon réflexe consiste surtout à préparer un sol compatible avec ses besoins plutôt qu’à compter sur un engrais présenté comme miraculeux.
La motte doit être bien humidifiée avant la mise en terre. Placez le collet au niveau du sol, puis rebouchez avec la terre extraite enrichie de compost mûr ou de feuilles bien décomposées. Laissez à l’arbuste l’espace correspondant à son port adulte, soit environ 2 à 3 m de hauteur et une largeur comparable. Une plantation trop profonde ralentit l’installation, et l’hamamélis n’a pas signé pour vivre en pensionnaire contrarié.
- Choisissez un emplacement à l’ombre légère ou à mi-ombre, protégé des conditions les plus desséchantes.
- Préparez une terre légère, fraîche et non calcaire, puis ajoutez du compost mûr si le sol manque de matière organique.
- Humidifiez la motte avant la plantation et dégagez délicatement les racines qui tournent autour du contenant.
- Installez l’arbuste avec le collet au niveau du sol et gardez son port évasé en tête pour déterminer la distance avec les autres plantes.
- Arrosez après le rebouchage et surveillez la fraîcheur du sol pendant la première période estivale.
Sol frais, feuilles au frais
Hamamelis mollis supporte mal les longues périodes de sécheresse au moment de son installation. Maintenez donc une humidité régulière en été sans transformer le pied en bassin. Un paillage organique peut limiter l’évaporation, mais il ne remplace pas l’arrosage lorsque le sol reste sec pendant plusieurs semaines. Spoiler : le paillage ne suffit pas toujours.
Un manque d’eau peut provoquer une chute prématurée des feuilles et réduire les couleurs automnales attendues. Le suivi porte surtout sur le premier été et sur les périodes chaudes. Une fois l’enracinement réalisé, l’arbuste devient plus autonome si le terrain reste frais et si les racines ne subissent pas une forte concurrence.
Taille douce, arbuste heureux
La taille n’est pas indispensable pour conserver la silhouette de l’hamamélis. Après la floraison, retirez les rameaux morts, trop âgés ou mal placés. Une réduction légère des extrémités peut favoriser la ramification, mais les coupes sévères défont son port naturellement évasé. On taille pour corriger, pas pour refaire l’arbuste à coups de sécateur vengeur.
Les cultivars diffèrent par la couleur et la taille de leurs fleurs, ainsi que par la hauteur et le port de l’arbuste. Hamamelis mollis est aussi l’un des deux parents de Hamamelis × intermedia, l’autre étant Hamamelis japonica. Hamamelis virginiana se distingue par une floraison automnale, généralement de septembre à novembre : autre saison, autre stratégie, même famille.
La capsule qui joue aux grandes orgues
Le fruit mûrit environ un an après la pollinisation. Cette capsule ligneuse, longue d’environ 12 mm, se fend à son extrémité et expulse deux graines noires et brillantes. Le phénomène relève de l’autochorie, c’est-à-dire une dissémination assurée par la plante elle-même.
En août 2019, l’article scientifique A seed flying like a bullet: ballistic seed dispersal in Chinese witch-hazelpublié dans Journal of the Royal Society Interfacea mesuré une vitesse maximale de 12,3 m/s. L’accélération atteignait 19 853 m/s², soit près de 2 000 g, et la rotation pouvait atteindre 25 714 tours par minute. La capsule ne fait donc pas semblant : elle stocke une pression mécanique avant de libérer la graine.
Pendant le séchage, l’enveloppe externe du fruit se contracte et se fend. La partie interne se déforme en trois dimensions, une constriction se forme au milieu de la capsule et des structures cellulaires retiennent la graine jusqu’à la rupture. Le départ produit un claquement net. Une arête de la graine et de minuscules différences entre sa surface et celle du fruit participent à sa rotation.
La dispersion de Hamamelis mollis repose sur une mécanique de précision, avec une capsule qui transforme le séchage en lancement balistique. Les mesures de 2019 ne donnent pas une distance identique pour chaque fruit, mais elles expliquent pourquoi les graines peuvent partir à plusieurs mètres. Semer, ici, c’est parier sur l’avenir avec une capsule qui refuse de rester à sa place.
La génétique sort du tiroir

Hamamelis mollis possède aussi un intérêt pour la conservation de la diversité végétale. Une publication d’octobre 2018 dans Applications in Plant Sciences a développé des marqueurs microsatellites destinés à étudier la diversité génétique de l’espèce, décrite dans cette étude comme endémique du sud de la Chine.
Les chercheurs ont identifié 80 282 séquences répétées dans le génome assemblé, conçu 72 097 paires d’amorces et testé 136 amorces synthétisées. Parmi elles, 96 ont pu être amplifiées et 22 ont montré un polymorphisme. Ces outils servent à comparer la diversité génétique des populations. Ils ne permettent pas de prédire quel cultivar fleurira le mieux dans une cour donnée : pour cela, le sol, l’exposition et le climat gardent leur mot à dire.
Au jardin, cette donnée remet simplement l’arbuste décoratif à sa place botanique. Les cultivars et les hybrides ne sont pas des variantes interchangeables, et Hamamelis × intermedia rassemble des sélections issues d’un croisement entre Hamamelis mollis et Hamamelis japonica. Notre cher voisin peut donc continuer à appeler cela un noisetier, mais la génétique ne signera pas son conseil.
Plant importé, œil averti

En 2026, l’Autorité européenne de sécurité des aliments, l’EFSA, a publié une évaluation du risque phytosanitaire concernant des plants enracinés en pot de Hamamelis mollis importés du Royaume-Uni. L’avis porte sur une voie d’introduction précise et ne constitue pas un diagnostic de tous les hamamélis cultivés dans les jardins français.
Deux organismes réglementés ont été retenus comme pertinents pour cette marchandise : des isolats non européens de Phytophthora ramorum et le thrips Scirtothrips dorsalis. L’EFSA évalue le risque scientifique associé à la marchandise. Elle ne prend pas elle-même la décision de gestion applicable aux importations.
Après la plantation, le calendrier se lit entre décembre et mars pour les fleurspuis autour d’un an après la pollinisation pour la capsule. L’arbuste prend son temps, colore ses feuilles en automne et prépare son petit mécanisme de lancement. Les noisettes peuvent donc rester chez le noisetier : chez l’hamamélis, les graines savent partir sans prévenir.
Sources et références scientifiques
- A seed flying like a bullet: ballistic seed dispersal in Chinese witch-hazel (Hamamelis mollis OLIV., Hamamelidaceae) – PMC. Journal of the Royal Society, Interface. DOI: 10.1098/rsif.2019.0327 · PMID: 31387485.
- 1.Sakes A, van der Wiel M, Henselmans PWJ, van Leeuwen JL, Dodou D, Breedveld P. 2016. Shooting mechanisms in nature: a systematic review. PLoS ONE 11, e0158277 ( 10.1371/journal.pone.0158277) [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1371/journal.pone.0158277.
- attie AJ, Lyons N. 1975. Seed dispersal in Viola (Violaceae): adaptations and strategies. Am. J. Bot. 62, 714-722. ( 10.1002/j.1537-2197.1975.tb14104.x) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/j.1537-2197.1975.tb14104.x.
- 3.Swaine MD, Beer T. 1977. Explosive seed dispersal in Hura crepitans L. (Euphorbiaceae). New Phytol. 78, 695-708. ( 10.1111/j.1469-8137.1977.tb02174.x) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1469-8137.1977.tb02174.x.
- 4.Witztum A, Schulgasser K. 1995. The mechanics of seed expulsion in Acanthaceae. J. Theor. Biol. 176, 531-542. ( 10.1006/jtbi.1995.0219) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1006/jtbi.1995.0219.
- 5.Van Der Burgt XM. 1997. Explosive seed dispersal of the rainforest tree Tetraberlinia moreliana (Leguminosae-Caesalpinioideae) in Gabon. J. Trop. Ecol. 13, 145-151. ( 10.1017/S0266467400010336) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1017/S0266467400010336.
- 6.Hayashi M, Feilich KL, Ellerby DJ. 2009. The mechanics of explosive seed dispersal in orange jewelweed (Impatiens capensis). J. Exp. Biol. 60, 2045-2053. ( 10.1093/jxb/erp070) [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jxb/erp070.
- 7.Vaughn KC, Bowling AJ, Ruel KJ. 2011. The mechanism for explosive seed dispersal in Cardamine hirsuta (Brassicaceae). Am. J. Bot. 98, 1276-1285. ( 10.3732/ajb.1000374) [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3732/ajb.1000374.
- 8.Cooper ES, Mosher MA, Cross CM, Whitaker DL. 2018. Gyroscopic stabilization minimizes drag on Ruellia ciliatiflora seeds. J. R. Soc. Interface 15, 20170901 ( 10.1098/rsif.2017.0901) [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1098/rsif.2017.0901.
- 9.Tiffney BH. 1986. Fruit and seed dispersal and the evolution of the Hamamelidae. Ann. Missouri Bot. Gard. 73, 394-416. ( 10.2307/2399119) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2307/2399119.
- 10.Shoemaker DN. 1905. On the development of Hamamelis virginiana. Bot. Gaz. 39, 248-266. ( 10.1086/328615) [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1086/328615.
- 11.Endress PK. 1993. Hamamelidaceae. In The families and genera of vascular plants. Flowering plants. Dicotyledons. Magnoliid, Hamamelid and Caryophyllid families (eds Kubitzki K, Rohwer JG, Bittrich V), pp. 322-331. Berlin, Germany: Springer. [Google Scholar].
- 12.Eichholz G. 1885. Untersuchungen über den Mechanismus einiger zur Verbreitung von Samen und Früchten dienender Bewegungserscheinungen. Jb. Wiss. Bot. 17, 543-594. [Google Scholar].
- Identification and development of microsatellite markers in Hamamelis mollis (Hamamelidaceae) – PMC. Applications in plant sciences. DOI: 10.1002/aps3.1189 · PMID: 30386715.
- Doyle, J. J., and Doyle J. L.. 1987. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin 19: 11-15. [Google Scholar].
- Fan, Q., Chen S. F., Li M. W., He S. Y., Zhou R. C., and Liao W. B.. 2013. Development and characterization of microsatellite markers from the transcriptome of Firmiana danxiaensis (Malvaceae s.l.). Applications in Plant Sciences 1(12): 1300047. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Hatmaker, E. A., Wadl P. A., Mantooth K., Scheffler B. E., Ownley B. H., and Trigiano R. N.. 2015. Development of microsatellites from Fothergilla ×intermedia (Hamamelidaceae) and cross transfer to four other genera within Hamamelidaceae. Applications in Plant Sciences 3(4): 1400123. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Hernandez, D., Francois P., Farinelli L., Osteras M., and Schrenzel J.. 2008. De novo bacterial genome sequencing: Millions of very short reads assembled on a desktop computer. Genome Research 18: 802-809. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Li, J., Bogle A. L., and Klein A. S.. 1999. Phylogenetic relationships in the Hamamelidaceae: Evidence from the nucleotide sequences of the plastid gene matK. Plant Systematics and Evolution 218: 205-219. [Google Scholar].
- Li, Z. Z., Tian H., and Zhang J. J.. 2017. Characterization and development of EST‐derived SSR markers in Sinowilsonia henryi (Hamamelidaceae). Applications in Plant Sciences 5(11): 1700080. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Meng, K. K., Li M. W., Fan Q., Tan W. Z., Sun J., Liao W. B., and Chen S. F.. 2016. Isolation and identification of EST‐SSR markers in Chunia bucklandioides (Hamamelidaceae). Applications in Plant Sciences 4(10): 1600064. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Patel, R. K., and Jain M.. 2012. NGS QC Toolkit: A toolkit for quality control of next generation sequencing data. PLoS ONE 7: e30619. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Peakall, R., and Smouse P. E.. 2012. GenAlEx 6.5: Genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research, An update. Bioinformatics 28: 2537-2539. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Rozen, S., and Skaletsky H.. 1999. Primer3 on the WWW for general users and for biologist programmers In Misener S. and Krawetz S. A. [eds.], Methods in molecular biology, vol. 132: Bioinformatics: Methods and protocols, 365-386. Humana Press, Totowa, New Jersey, USA. [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Sugai, K., and Setsuko S.. 2016. Novel microsatellite markers for Distylium lepidotum (Hamamelidaceae) endemic to the Ogasawara Islands. BMC Research Notes 9: 332. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
- Thiel, T., Michalek W., Varshney R. K., and Graner A.. 2003. Exploiting EST databases for the development and characterization of gene‐derived SSR‐markers in barley (Hordeum vulgare L.). Theoretical and Applied Genetics 106: 411-422. [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Commodity risk assessment of Hamamelis mollis plants from the UK – PMC. EFSA journal. European Food Safety Authority. DOI: 10.2903/j.efsa.2026.9943 · PMID: 41743818.
- Atkinson, T. H. (online). Bark and ambrosia beetles..
- Cave, G. L., Randall‐Schadel, B., & Redlin, S. C. (2008). Risk analysis for Phytophthora ramorum Werres, de Cock & Man in’t Veld, causal agent of sudden oak death, ramorum leaf blight, and ramorum dieback. US Department of Agriculture, Animal and Plant Health Inspection Service. [Google Scholar].
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health). (2019). Guidance on commodity risk assessment for the evaluation of high risk plants dossiers. EFSA Journal, 17(4), 5668. 10.2903/j.efsa.2019.5668 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2019.5668.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., der Van Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2022). Commodity risk assessment of Ligustrum delavayanum topiary plants grafted on Ligustrumjaponicum from the UK. EFSA Journal, 20(11), 7593. 10.2903/j.e. doi:10.2903/j.efsa.2022.7593.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., Van der Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2023a). Commodity risk assessment of Acercampestre plants from the UK. EFSA Journal, 21(7), 8071. 10.2903/j.efsa.2023.8071 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2023.8071.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., Van der Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2023b). Commodity risk assessment of Acer palmatum plants from the UK. EFSA Journal, 21(7), 8075. 10.2903/j.efsa.2023.8075 [DOI] [PMC free article] [PubMed. doi:10.2903/j.efsa.2023.8075.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., Van der Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2023c). Commodity risk assessment of Acerplatanoides plants from the UK. EFSA Journal, 21(7), 8073. 10.2903/j.efsa.2023.8073 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2023.8073.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., Van der Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2023d). Commodity risk assessment of Acerpseudoplatanus plants from the UK. EFSA Journal, 21(7), 8074. 10.2903/j.efsa.2023.8074 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2023.8074.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Potting, R., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., Van der Werf, W., Vicent Civera, A., Yuen, J., … Gonthier, P. (2023e). Commodity risk assessment of Fagussylvatica plants from the UK. EFSA Journal, 21(7), 8118. 10.2903/j.efsa.2023.8118 [DOI] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2023.8118.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Jaques Miret, J. A., & Gonthier, P. (2023f). Commodity risk assessment of Quercus petraea plants from the UK. EFSA Journal, 21(10), 8313. 10.2903/j.efsa.2023.8313 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.2903/j.efsa.2023.8313.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Vicent Civera, A., Baptista, P., Berlin, A., Chatzivassiliou, E., Cubero, J., Civera, A. V., Cunniffe, N., de la Peña, E., Desneux, N., Di Serio, F., Filipiak, A., Hasiów‐Jaroszewska, B., Jactel, H., Landa, B. B., Maistrello, L., Makowski, D., Milonas, P., Papadopulos, N. T., … Gonthier, P. (2024a). Commodity risk assessment of Betulapendula and Betulapubescens plants from the UK. EFSA Journal, 22(11), 9051. 10.2903/j.efsa.2024.9051 [DOI] [PMC free ar. doi:10.2903/j.efsa.2024.9051.
- EFSA PLH Panel (EFSA Panel on Plant Health), Bragard, C., Baptista, P., Chatzivassiliou, E., Di Serio, F., Gonthier, P., Jaques Miret, J. A., Justesen, A. F., MacLeod, A., Magnusson, C. S., Milonas, P., Navas‐Cortes, J. A., Parnell, S., Reignault, P. L., Stefani, E., Thulke, H.‐H., der Van Werf, W., Civera, A. V., Yuen, J., … Potting, R. (2024b). Commodity risk assessment of Cornusalba and Cornussanguinea plants from the UK. EFSA Journal, 22(3), 8657. 10.2903/j.efsa.2024.8657 [DOI] [Google Schol. doi:10.2903/j.efsa.2024.8657.
- Bruno Nunez. L’Hamamélis, le noisetier des sorcières : Des fleurs étranges en hiver. 2019.
- Contributeurs aux projets Wikimedia. espèce de plantes. 2024.
- [modifier | modifier le code].
- ↑ (en) « Hamamelis mollis », sur UICN Red List (consulté le 12 novembre 2024).
- 1 2 RHS A-Z encyclopedia of garden plants, United Kingdom, Dorling Kindersley, 2008, 1136 p. (ISBN 978-1405332965).
- 1 2 (en) Flora of China: Hamamelis mollis.
- ↑ Huxley, A., ed. (1992). New RHS Dictionary of Gardening. Macmillan (ISBN 0-333-47494-5).
- ↑ « RHS Plant Selector – Hamamelis mollis » (consulté le 27 mars 2022).
- ↑ « RHS Plantfinder – Hamamelis mollis ‘Jermyns Gold’ » (consulté le 2 mars 2018).
- ↑ « RHS Plantfinder – Hamamelis mollis ‘Wisley Supreme’ » (consulté le 2 mars 2018).
- ↑ « AGM Plants – Ornamental », Royal Horticultural Society, juillet 2017 (consulté le 2 mars 2018), p. 45.
- ↑ Lorraine Harrison, RHS Latin for gardeners, United Kingdom, Mitchell Beazley, 2012, 224 p. (ISBN 9781845337315).
- RHS A-Z encyclopedia of garden plants, United Kingdom, Dorling Kindersley, 2008, 1136 p. (ISBN 978-1405332965).
- (en) Flora of China: Hamamelis mollis.
- Contributors to Wikimedia projects. species of plant. 2007.
- 1 2 Zhang, Zhi-Yun; Zhang, Hongda; Endress, Peter K. « Hamamelis mollis ». Flora of China. Vol. 9 – via, Missouri Botanical Garden, St. Louis, MO & Harvard University Herbaria, Cambridge, MA..
- ↑ Harrison, Lorraine (2012). RHS Latin for gardeners. United Kingdom: Mitchell Beazley. p. 224. ISBN 9781845337315..
- ↑ Huxley, A., ed. (1992). New RHS Dictionary of Gardening. Macmillan ISBN 0-333-47494-5..
- ↑ « RHS Plant Selector – Hamamelis mollis ». Retrieved 27 March 2022..
- ↑ « RHS Plantfinder – Hamamelis mollis ‘Jermyns Gold' ». Retrieved 2 March 2018..
- ↑ « RHS Plantfinder – Hamamelis mollis ‘Wisley Supreme' ». Retrieved 2 March 2018..
- ↑ « AGM Plants – Ornamental » (PDF). Royal Horticultural Society. July 2017. p. 45. Retrieved 2 March 2018..
- RHS A-Z encyclopedia of garden plants. United Kingdom: Dorling Kindersley. 2008. p. 1136. ISBN 978-1405332965..
- Zhang, Zhi-Yun; Zhang, Hongda; Endress, Peter K. « Hamamelis mollis ». Flora of China. Vol. 9 – via, Missouri Botanical Garden, St. Louis, MO & Harvard University Herbaria, Cambridge, MA..
- . Retrieved 27 March 2022.
- . Retrieved 2 March 2018.
- Hamamélis de chine (Hamamelis mollis). 2016.






