L’anthémis des Canaries, ou Argyranthemum frutescensfleurit du printemps jusqu’aux premières gelées lorsque le soleil et le drainage sont au rendez-vous. Le hic, c’est que cette vivace peu rustique passe facilement pour une annuelle dès que l’hiver serre un peu la vis.
Originaire des Canaries et de Madère, cette marguerite forme un buisson ramifié de 30 cm à 1 m selon les variétés et les conditions de culture. Les capitules peuvent être blancs, roses ou jaunes, simples ou doubles. En climat tempéré, la floraison s’étend du printemps à l’automne, avec une pause possible au plus fort de l’été.
Anthémis, le nom qui sème le doute
Dans les jardineries, l’anthémis circule encore sous les appellations Anthemis frutescens et Chrysanthemum frutescens. Le nom botanique retenu est Argyranthemum frutescens. La ressemblance avec le chrysanthème explique la confusion, mais les deux plantes ne sont pas du même genre.
Une revue publiée par Rouhan et Gaudeul dans Methods in Molecular Biology en 2021 rappelle que la taxonomie végétale croise la morphologie, l’histoire des classifications et les données moléculaires. Une étude publiée dans Genes en 2022 a décrit le génome chloroplastique de Argyranthemum frutescens : 149 626 paires de bases et 132 gènes. Son analyse phylogénétique soutient le maintien d’Argyranthemum comme genre distinct.
Pour le jardinier, pas besoin de réciter le génome au moment de remplir son panier. Le nom correct aide surtout à éviter les confusions entre plantes aux besoins différents. Le repère de culture tient en deux mots : soleil et drainage.
Du soleil, sinon rien, mais pas les pieds dans l’eau
Installez l’anthémis au plein soleil ou sous une ombre très légère, dans une terre bien drainée. Les sols légers, sableux ou secs lui conviennent mieux qu’une parcelle compacte où l’eau reste bloquée après chaque pluie. En bord de mer, elle supporte les embruns, mais cette qualité ne transforme pas une terre lourde en terrain adapté.
Dans une conduite de jardin bio, on commence par observer le sol avant de chercher un produit. Ameublissez la zone si elle est tassée, évitez les excès d’arrosage et ne placez pas la motte dans une cuvette. Une terre qui respire vaut mieux qu’un arsenal de flacons. Ça négocie sévère avec les racines quand l’humidité s’installe.
Une fois bien enracinée, la plante supporte des périodes sèches. Après la plantation, arrosez le temps que la reprise s’effectue, puis espacez les apports lorsque le sol a séché. En pot, surveillez davantage le substrat, dont le faible volume sèche plus vite, et ne laissez pas d’eau stagner dans la soucoupe.
Le feuillage et les fleurs apprécient la lumière, même si certaines couleurs pâlissent sous un soleil très intense. Une ombre légère aux heures les plus chaudes peut alors préserver les teintes sans supprimer la floraison. Le sol, l’eau et la lumière décident souvent avant le jardinier.
Planter au printemps, sinon gare au planté trop tôt
En pleine terreplantez au printemps, après les dernières gelées de votre région. Une plantation d’automne reste possible dans les climats doux, mais les racines disposent de moins de temps pour s’installer avant le froid et les pluies. Ici, le calendrier météo compte davantage qu’une date recopiée chaque année.
- Choisissez un emplacement lumineux et protégé des vents froids.
- Préparez une terre qui évacue l’eau, sans créer de cuvette au pied.
- Installez la plante après les dernières gelées, puis arrosez pour assurer le contact entre la motte et le sol.
- Laissez ensuite le terrain sécher entre deux arrosages plutôt que de maintenir une humidité permanente.
Les formes compactes trouvent leur place en potée, en bordure ou dans une rocaille. Les variétés plus hautes conviennent à l’arrière d’un massif. La croissance est rapide, mais la hauteur finale peut varier de 30 cm à 1 m : mieux vaut donc regarder l’étiquette du cultivar que promettre à chaque godet le même gabarit.
Taille et floraison, on coupe court au bazar
Supprimez les fleurs fanées au fur et à mesure. Ce geste garde la touffe nette et favorise l’apparition de nouveaux capitules lorsque la lumière, la température et l’eau restent favorables. Il ne déclenche pas une floraison magique. La plante n’a pas signé pour ça.
Après un hiver doux, une taille peut être réalisée en mars pour reformer la plante. Si les tiges ont légèrement gelé, le pied peut repartir de la base au printemps. Évitez toutefois de rabattre un sujet encore affaibli par le froid ou l’humidité : il doit d’abord reprendre des forces.
Sur tige, ça tient la ligne
L’anthémis peut aussi être formé sur tige. On conserve une pousse verticale, on retire progressivement les branches et les rejets situés plus bas, puis on entretient la couronne par des tailles régulières. C’est une conduite patiente, pas une opération express entre deux arrosages.
Hiver : la marguerite fait ses valises

L’anthémis est peu rustique. Les repères horticoles situent sa résistance approximativement entre 0 et -5 °C selon l’humidité, le vent, l’exposition et la durée du froid. Une gelée brève dans un sol sec ne produit pas forcément les mêmes dégâts qu’un épisode froid prolongé dans une terre détrempée.
La culture en pot facilite cette protection, mais elle ne dispense pas de lumière et d’arrosages mesurés pendant la mauvaise saison. Le but est de maintenir la plante sans garder une motte détrempée. Autre option : renouveler le pied par bouturage plutôt que de miser toute la saison sur une souche exposée.
Les boutures herbacées se réalisent au printemps et les boutures semi-ligneuses en été. Cette multiplication permet de conserver une plante appréciée pour sa forme ou sa couleur. Protégez les jeunes plants du gel jusqu’à leur installation, car un petit sujet encaisse moins bien les écarts de température.
Humidité et collet, ça ne colle pas
Le sol reste le premier point à contrôler lorsqu’un anthémis jaunit ou perd de la vigueur. Regardez la base de la plante, l’état de la terre après la pluie et la vitesse d’évacuation de l’eau. La galle du collet peut aussi atteindre l’espèce. Avant d’accuser un insecte, on peut donc commencer par examiner le pied (oui, encore une histoire de sol).
Les pucerons peuvent s’installer sur les jeunes pousses. Une observation régulière permet de repérer les colonies avant qu’elles ne se multiplient, tandis qu’une touffe aérée et des apports d’azote modérés limitent les pousses trop tendres. En jardin bio, on évite surtout de traiter par réflexe chaque insecte qui passe : le massif n’est pas censé fonctionner comme une salle blanche.
Lorsque des parties sont fortement atteintes, retirez-les et jetez-les avec les déchets adaptés plutôt que de les laisser au pied. Pour toute intervention avec un produit, même présenté comme naturel, l’étiquette reste la référence pour l’usage, la dose et les précautions. Sur ce point, pas de pirouette.
Les gènes font leur part, le jardin aussi

La floraison ne dépend pas d’un seul geste de taille. Un article publié dans Scientific Reports en 2020 a identifié et caractérisé AfLFYun homologue du gène LEAFYchez Argyranthemum frutescens. Les chercheurs ont trouvé deux copies de ce gène et étudié leur expression au cours du développement de la plante.
Cette étude documente la biologie moléculaire de l’espèce, mais elle ne fournit pas une recette de jardinage. Elle ne permet pas de déduire une dose d’engrais, une taille précise ou une date de plantation. Au jardin, la floraison dépend toujours de l’exposition, de la température, de l’eau, de l’âge du pied et de son état général.
Planter après les gelées, offrir un sol drainé, supprimer les fleurs fanées et protéger la plante du froid forme une stratégie cohérente. Dans les régions froides, il faut accepter son statut saisonnier ou préparer des boutures. L’anthémis a peut-être un nom de vacances, mais la météo reste chargée de décider qui garde la chambre pour l’hiver.
Sources et références scientifiques
- Rouhan G, Gaudeul M.. Plant Taxonomy: A Historical Perspective, Current Challenges, and Perspectives.. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.). 2021. DOI: 10.1007/978-1-0716-0997-2_1 · PMID: 33301085. (résumé scientifique structuré; texte intégral non fourni)
- AfLFY, a LEAFY homolog in Argyranthemum frutescens, controls flowering time and leaf development – PMC. Scientific reports. DOI: 10.1038/s41598-020-58570-x · PMID: 32005948.
- 1.Wellmer F, Riechmann JL. Gene networks controlling the initiation of flower development. Trends in Genetics. 2010;26:519-527. doi: 10.1016/j.tig.2010.09.001. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tig.2010.09.001.
- 2.Li J, Gu HY, Wang ZM, Tang QL, Song M. Research progress of flowering gene regulatory networks in Arabidopsis thaliana. Biotechnology Bulletin. 2014;12:1-8. [Google Scholar].
- 3.Wils CR, Kaufmann K. Gene-regulatory networks controlling inflorescence and flower development in Arabidopsis thaliana. Biochimica et Biophysica Acta. 2017;1860:95-105. doi: 10.1016/j.bbagrm.2016.07.014. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.bbagrm.2016.07.014.
- 4.Lee H, et al. The AGAMOUS-LIKE 20 MADS domain protein integrates floral inductive pathways in Arabidopsis. Gene & Development. 2000;14:2366-2376. doi: 10.1101/gad.813600. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1101/gad.813600.
- 5.Borner R, et al. A MADS domain gene involved in the transition to flowering in Arabidopsis. The Plant Journal. 2000;24:591-599. doi: 10.1046/j.1365-313x.2000.00906.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1046/j.1365-313x.2000.00906.x.
- 6.Moon J, et al. The SOC1 MADS-box gene integrates vernalization and gibberellin signals for flowering in Arabidopsis. Plant Journal. 2003;35:613-623. doi: 10.1046/j.1365-313X.2003.01833.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1046/j.1365-313X.2003.01833.x.
- 7.Liu C, et al. Direct interaction of AGL24 and SOC1 integrates flowering signals in Arabidopsis. Development. 2008;135:1481-1491. doi: 10.1242/dev.020255. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1242/dev.020255.
- 8.Putterill J, Robson F, Lee K, Simon R, Coupland G. The CONSTANS gene of Arabidopsis promotes flowering and encodes a protein showing similarities to zinc finger transcription factors. Cell. 1995;80:847-857. doi: 10.1016/0092-8674(95)90288-0. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/0092-8674(95)90288-0.
- 9.Yanovsky MJ, Kay SA. Molecular basis of seasonal time measurement in Arabidopsis. Nature. 2002;419:308-312. doi: 10.1038/nature00996. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/nature00996.
- 10.Valverde F, et al. Photoreceptor regulation of CONSTANS protein in photoperiodic flowering. Science. 2004;303:1003-1006. doi: 10.1126/science.1091761. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1126/science.1091761.
- 11.Coen ES, et al. Florieaula: A homeotic gene required for flower development in antirrhnum majus. Cell. 1990;63:1311-1322. doi: 10.1016/0092-8674(90)90426-F. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/0092-8674(90)90426-F.
- 12.Weigel D, Alvarez J, Smyth DR, Yanofsky MF, Meyerowitz EM. LEAFY controls floral meristem identity in Arabidopsis. Cell. 1992;69:843-859. doi: 10.1016/0092-8674(92)90295-N. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/0092-8674(92)90295-N.
- Characterization of the Chloroplast Genome of Argyranthemum frutescens and a Comparison with Other Species in Anthemideae – PMC. Genes. DOI: 10.3390/genes13101720 · PMID: 36292605.
- 1.Jensen P., Leister D. Chloroplast evolution, structure and functions. F1000 Prime Rep. 2014;6:40. doi: 10.12703/P6-40. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.12703/P6-40.
- 2.Liu X., Zhou B., Yang H., Li Y., Yang Q., Lu Y., Gao Y. Sequencing and Analysis of Chrysanthemum carinatum Schousb and Kalimeris indica. The Complete Chloroplast Genomes Reveal Two Inversions and rbcL as Barcoding of the Vegetable. Molecules. 2018;23:1358. doi: 10.3390/molecules23061358. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/molecules23061358.
- 3.Palmer J.D. The Molecular Biology of Plastids. Academic Press; Pittsburgh, PA, USA: 1991. CHAPTER 2-Plastid chromosomes: Structure and evolution. [Google Scholar].
- 4.Jansen R.K., Raubeson L.A., Boore J.L., Depamphilis C.W., Chumley T.W., Haberle R.C., Wyman S.K., Alverson A.J., Peery R., Herman S.J., et al. Methods for Obtaining and Analyzing Whole Chloroplast Genome Sequences. Methods Enzymol. 2005;395:348-384. doi: 10.1016/S0076-6879(05)95020-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/S0076-6879(05)95020-9.
- 5.Ma Y., Zhao L., Zhang W., Zhang Y., Xing X., Duan X., Hu J., Harris A.J., Liu P., Dai S., et al. Origins of cultivars of Chrysanthemum, Evidence from the chloroplast genome and nuclear LFY gene. J. Syst. Evol. 2020;58:925-944. doi: 10.1111/jse.12682. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/jse.12682.
- 6.Li Y., Zhang J., Li L., Gao L., Xu J., Yang M. Structural and Comparative Analysis of the Complete Chloroplast Genome of Pyrus hopeiensis, “Wild Plants with a Tiny Population”, and Three Other Pyrus Species. Int. J. Mol. Sci. 2018;19:3262. doi: 10.3390/ijms19103262. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/ijms19103262.
- 7.Ahmed I., Biggs P.J., Matthews P.J., Collins L.J., Hendy M.D., Lockhart P.J. Mutational dynamics of aroid chloroplast genomes. Genome Biol. Evol. 2012;4:1316-1323. doi: 10.1093/gbe/evs110. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/gbe/evs110.
- 8.Song W., Chen Z., He L., Feng Q., Zhang H., Du G., Shi C., Wang S. Comparative chloroplast genome analysis of wax gourd (Benincasa hispida) with three Benincaseae Species, revealing evolutionary dynamic patterns and phylogenetic implications. Genes. 2022;13:461. doi: 10.3390/genes13030461. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/genes13030461.
- 9.Jansen R.K., Cai Z., Raubeson L.A., Daniell H., Depamphilis C.W., Leebens-Mack J., Müller K.F., Guisinger-Bellian M., Haberle R.C., Hansen A.K., et al. Analysis of 81 genes from 64 plastid genomes resolves relationships in angiosperms and identifies genome-scale evolutionary patterns. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007;104:19369-19374. doi: 10.1073/pnas.0709121104. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.0709121104.
- 10.Zhang N., Erickson D.L., Ramachandran P., Ottesen A.R., Timme R.E., Funk V.A., Luo Y., Handy S.M. An analysis of Echinacea chloroplast genomes: Implications for future botanical identification. Sci. Rep. 2017;7:216. doi: 10.1038/s41598-017-00321-6. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41598-017-00321-6.
- 11.Zhang X., Zhang H., Landis J., Deng T., Meng A., Sun H., Peng Y., Wang H., Sun Y. Plastome phylogenomic analysis of Torreya (Taxaceae) J. Syst. Evol. 2019;57:607-615. doi: 10.1111/jse.12482. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/jse.12482.
- 12.Wang H., Moore M., Barrett R., Landrein S., Sakaguchi S., Maki M., Weng H., Wang H. Plastome phylogenomic insights into the Sino-Japanese biogeography of Diabelia (Caprifoliaceae) J. Syst. Evol. 2020;58:972-987. doi: 10.1111/jse.12560. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1111/jse.12560.
- Development of the sequence-characterized amplified region (SCAR) marker for distinction of intergeneric hybrids between Argyranthemum frutescens (L.) Sch. Bip. and Rhodanthemum gayanum (Cross. & Durieu) B.H. Wilcox, K. Bremer & Humphries – PMC. Plant biotechnology (Tokyo, Japan). DOI: 10.5511/plantbiotechnology.19.1104a · PMID: 32362751.
- Agarwal M, Shrivastava N, Padh H (2008) Advances in molecular marker techniques and their applications in plant sciences. Plant Cell Rep 27: 617-631 [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Álvarez I, Wendel JF (2003) Ribosomal ITS sequences and plant phylogenetic inference. Mol Phylogenet Evol 29: 417-434 [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Baldwin BG (1992) Phylogenetic utility of the internal transcribed spacers of nuclear ribosomal DNA in plants: An example from the Compositae. Mol Phylogenet Evol 1: 3-16 [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Bautista R, Crespillo R, Cánovas FM, Gonzalo Claros M (2003) Identification of olive-tree cultivars with SCAR markers. Euphytica 129: 33-41 [Google Scholar].
- Bramwell D, Bramwell Z (2001) Wild Flowers of the Canary Islands. Editorial Rueda, Madrid.
- Bremer K (1994) Asteraceae. Cladistics & Classification. Timber Press, Oregon.
- Chen YM, Mii M (2012) Interspecific hybridization of Begonia semperflorens (section Begonia) with B. pearcei (section Eupetalum) for introducing yellow flower color. Plant Biotechnol 29: 77-85 [Google Scholar].
- Cheng T, Xu C, Lei L, Li C, Zhang Y, Zhou S (2016) Barcoding the kingdom Plantae: New PCR primers for ITS regions of plants with improved universality and specificity. Mol Ecol Resour 16: 138-149 [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
- Eriksson T, Hibbs MS, Yoder AD, Delwiche CF, Donoghue MJ (2003) The phylogeny of Rosoideae (Rosaceae) based on sequences of the internal transcribed spacers (ITS) of nuclear ribosomal DNA and the trnL/F region of chloroplast DNA. Int. J. Plant Sci 164: 197-211 [Google Scholar].
- Francisco-Ortega J, Santos-Guerra A, Hines A, Jansen RK (1997) Molecular evidence for a Mediterranean origin of the Macaronesian endemic genus Argyranthemum (Asteraceae). Am J Bot 84: 1595-1613 [PubMed] [Google Scholar].
- Inaba Z, Iwazaki Y, Baba F, Ishii C, Ishii K, Oyama-Okubo N, Nakayama M (2008) Floral scent compounds of Argyranthemum and Argyranthemum × Glebionis cultivars. Hortic Res 7(Suppl.2): 289 (In Japanese) [Google Scholar].
- Iwazaki Y, Inaba Z (2008) Production of floral scent cultivars by intergeneric hybridization of Argyranthemum and Glebionis using ovule culture. Hortic Res 7(Suppl.2): 290 (In Japanese) [Google Scholar].
- Bruno Nunez. Anthemis frutescens, Argyranthemum : fleuri jusqu’en automne. 2021.
- Anthémis – Argyranthemum frutescens – Fausse Camomille – Plante annuelle très florifère qui offre une profusion de fleurs proches des Marguerites et Pâquerettes pour massifs, rocailles et jardinières au soleil..
- Nathalie Guellier. Anthémis (Argyranthemum frutescens), marguerite des Canaries. 2017.
- Eva Deuffic. L’anthémis des Canaries et ses variétés, une floraison époustouflante. 2022.






