Camellia sasanqua : planter en octobre, fleurir jusqu’en janvier, mais le gel veille

Le Camellia sasanqua fleurit surtout d’octobre à décembre, parfois jusqu’en janvier ou février après un hiver doux. Sol acide, lumière filtrée et arrosage suivi l’aident à garder ses boutons loin du gel et des fleurs brunes.

Sasanqua, ça sent l’automne

Signpost in front of a blooming camellia tree
Photo de jegal gihwan sur Unsplash.

Le Camellia sasanquaappelé camélia d’automne, conserve son feuillage toute l’année. Il atteint généralement 2 à 3 m de hauteur et d’étalement, avec des feuilles plus petites que celles du camélia du Japon. Ses fleurs peuvent être simples, semi-doubles ou doubles, dans des tons blancs, roses ou rouges.

La floraison commence principalement en octobre et se poursuit jusqu’en décembre. Certaines variétés tiennent jusqu’en janvier, voire février lorsque l’hiver reste doux. Les fleurs sont souvent parfumées, parfois discrètement seulement. Il faut donc approcher le nez, pas attendre que le jardin fasse lui-même l’annonce au mégaphone.

Le sasanqua accepte davantage de lumière que le Camellia japonicamais il ne réclame pas pour autant un plein soleil brûlant toute l’après-midi. En climat doux et humide, une exposition plus claire peut convenir. En région chaude ou sèche, une ombre légère reste plus sûre.

Le sol, terre à terre, ne pardonne rien

a close up of a flower on a tree
Photo de Zoshua Colah sur Unsplash.

Le camélia est une plante acidophile. Un pH situé autour de 5,5 à 6,5 lui convient, dans une terre humifère, fraîche et drainante. Le calcaire complique la culture et peut provoquer des feuilles jaunissantes. Ajouter de l’engrais au hasard ne règle pas un sol mal adapté.

Un terrain lourd et gorgé d’eau pose aussi problème. Les racines superficielles supportent mal l’excès d’humidité, surtout pendant la mauvaise saison. Une terre de jardin non calcaire peut être améliorée avec du compost mûr ou du terreau de feuilles et un substrat acide. La terre de bruyère utilisée seule ne garantit pas un bon équilibre entre rétention d’eau et drainage. Ça sèche en bloc, ça se gorge, puis ça recommence : pas franchement le spa rêvé pour les racines.

Planter sans se planter

Red and white camellia flowers covered in snow
Photo de J. Young Jeong sur Unsplash.

Octobre et novembre offrent de bonnes conditions pour installer un camélia en pleine terre : la terre reste encore douce et les pluies facilitent la reprise. Un sujet vendu en conteneur peut être planté hors période de gel et de fortes chaleurs, mais l’automne reste la période la plus simple à gérer.

La floraison automnale permet aussi de choisir une variété en observant directement la couleur, la forme et le parfum des fleurs. C’est plus fiable qu’une étiquette qui promet beaucoup avec une photo prise sous un soleil de catalogue.

Le collet ne doit pas jouer au yo-yo

  1. Préparez un trou plus large que la motte et ameublissez ses parois.
  2. Humidifiez la motte avant la mise en place si elle est sèche.
  3. Installez l’arbuste avec le collet au niveau du sol, sans l’enterrer.
  4. Rebouchez avec la terre préparée, arrosez et posez un paillage de feuilles mortes ou d’écorces.

Le paillage limite les variations d’humidité et de température autour des racines. Il ne doit pas toucher directement le tronc. Dans un jardin bio, ce sont souvent ces réglages patients qui font la différence, pas le sac d’engrais sorti en urgence parce que le voisin a encore donné un conseil contradictoire.

Soleil oui, coup de chaud non

Installez le sasanqua à mi-ombre, à l’abri des vents froids et desséchants. Une lumière filtrée par un arbre ou une place protégée près d’un mur lui convient mieux qu’un plein soleil brûlant toute l’après-midi. Le feuillage vernissé tolère la lumière, mais il n’aime ni la sécheresse prolongée ni les changements brutaux de température.

Les boutons et les fleurs sont plus sensibles au gel que le bois de l’arbuste. Une gelée suivie d’un soleil direct peut brunir les boutons avant leur ouverture. Une exposition où la lumière arrive progressivement le matin réduit ce risque. Dans les régions froides, cultivez-le à l’abri du vent et protégez ponctuellement les parties aériennes lors des épisodes de gel.

La rusticité souvent annoncée autour de -12 à -15 °C concerne la survie de l’arbuste, pas la conservation de chaque bouton floral. Un camélia peut résister au froid et perdre sa floraison : le bois tient, les fleurs trinquent.

Arroser, pailler, tailler : le trio pas très rock

red flower in macro shot
Photo de Nick Fewings sur Unsplash.

Après la plantation, arrosez régulièrement pour que la motte ne sèche pas complètement. Une fois l’arbuste installé, surveillez surtout les périodes de sécheresse prolongée. La terre doit rester fraîche, jamais détrempée. En pot, le substrat sèche plus vite et la soucoupe ne doit pas conserver d’eau.

L’eau de pluie convient mieux qu’une eau très calcaire lorsque celle-ci est fortement minéralisée. Un apport de compost mûr en surface au début du printemps accompagne la croissance dans un sol adapté. Les apports de fumier ou d’engrais ne compensent ni un mauvais pH ni un drainage défaillant. Nul besoin d’envoyer du lourd quand le problème se trouve sous les racines.

La taille n’est pas obligatoire. Supprimez les branches mortes, abîmées ou mal placées juste après la floraison. Une taille plus tardive peut retirer les rameaux qui porteront les fleurs de la saison suivante. Le port souple, parfois légèrement retombant, convient à une haie libre ou à un claustra.

Cochenilles : ça colle, mais ça se surveille

red Japanese camellia flower
Photo de MAK sur Unsplash.

Les cochenilles s’installent sur les feuilles et les rameaux. Elles prélèvent la sève et peuvent produire du miellat, sur lequel une fumagine noire se développe. Inspectez l’envers des feuilles, les nervures et les jeunes branches, en particulier sur les sujets cultivés en pot.

Un article publié en 2024 dans BMC Genomicsintitulé Transcriptome analysis reveals the potential mechanism of the response to scale insects in Camellia sasanqua Thunba étudié des feuilles de Camellia sasanqua infestées par la cochenille Pseudaulacaspis sasakawai à Kunming, en Chine. Les chercheurs ont relevé 1 320 gènes dont l’expression variait entre les feuilles infestées et les feuilles témoins.

Cette étude décrit une réponse biologique dans un contexte précis. Elle ne donne pas une recette de traitement valable pour tous les jardins. Elle justifie surtout une inspection régulière : repérer tôt une infestation évite parfois la grosse galère de juillet.

Fleurs doubles, gènes en cascade

Double exposure of blooming camellias in a garden setting, showcasing delicate pink petals and vibrant greenery.
Photo de Micheile Henderson sur Pexels.

Le choix d’une variété modifie la forme des fleurs, leur parfum et parfois la période de floraison. Une étude publiée en 2022 dans BMC Plant Biologysous le titre Floral organ transcriptome in Camellia sasanqua provided insight into stamen petaloida comparé un type sauvage et plusieurs formes à fleurs semi-doubles ou doubles.

Les résultats associent la transformation de certaines étamines en organes ressemblant à des pétales à des différences d’expression de gènes, notamment dans la signalisation hormonale et le métabolisme secondaire. Une fleur double n’est donc pas simplement une fleur simple à laquelle on aurait ajouté quelques pétales avec une bonne dose d’engrais.

La portée reste celle d’une étude de transcriptomique. Elle aide à comprendre la diversité florale des cultivars, mais elle ne permet pas de promettre qu’une taille, un arrosage ou un fertilisant fera doubler les fleurs. Pour choisir, observer la variété en floraison reste le pari le moins hasardeux.

En pot, le plan B tient la route

Red camellia flowers bloom in a garden setting sunlit garden
Photo de Preillumination SeTh sur Unsplash.

Le sasanqua se cultive en bac sur une terrasse ou un balcon abrité. Le contenant doit évacuer l’eau, le substrat rester acide et l’arrosage suivre le séchage de la surface sans laisser d’eau stagnante. En hiver, rapprochez le pot d’un mur protégé et isolez le contenant lors des fortes gelées : les racines en bac sont plus exposées que celles d’un arbuste en pleine terre.

Un surfaçage printanier renouvelle la couche supérieure du substrat. Le rempotage intervient généralement tous les deux ou trois ans, dans un contenant seulement un peu plus grand. Un bac énorme rempli de terre humide n’est pas un cadeau pour les racines. C’est un marécage avec des poignées.

Sol acide, lumière tamisée, eau peu calcaire et taille après floraison forment la vraie feuille de route. Pour le reste, la météo garde son mot à dire. Elle adore d’ailleurs corriger les calendriers au dernier moment.

Sources et références scientifiques
  1. Floral organ transcriptome in Camellia sasanqua provided insight into stamen petaloid – PMC. BMC plant biology. DOI: 10.1186/s12870-022-03860-x · PMID: 36199021.
  2. 1.Fan ML, Yang K, Zhou R, Liu QH, Guo X, Sun YK. Temporal transcriptome profiling reveals candidate genes involved in cold acclimation of Camellia japonica (Naidong) Plant Physiol Biochem. 2021;167:795-805. doi: 10.1016/j.plaphy.2021.09.006. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.plaphy.2021.09.006.
  3. 2.Li JB, Hashimoto F, Shimizu K, Sakata Y. A new acylated anthocyan inform the red flowers of Camellia hongkongensis and characterization of anthocyanins in the Section Camellia species. J Plant Ecol. 2009;51:545-552. doi: 10.1111/j.1744-7909.2009.00828.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1744-7909.2009.00828.x.
  4. 3.Fan ML, Zhang Y, Yang MY, Wu S, Yin HF, Li JY, et al. Transcriptomic and Chemical Analyses Reveal the Hub Regulators of Flower Color Variation from Camellia japonica Bud Sport. Horticulturae. 2022;8:129. doi: 10.3390/horticulturae8020129. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/horticulturae8020129.
  5. 4.Li X, Li J, Fan Z, Liu Z, Tanaka T, Yin H. Global gene expression defines faded whorl specification of double flower domestication in Camellia. Sci Rep. 2017;7(1):3197. doi: 10.1038/s41598-017-03575-2. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41598-017-03575-2.
  6. 5.Hollender CA, Kang C, Darwish O, Geretz A, Matthews BF, Slovin J, et al. Floral Transcriptomes in Woodland Strawberry Uncover Developing Receptacle and Anther Gene Networks. Plant Physiol. 2014;165(3):1062-1075. doi: 10.1104/pp.114.237529. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1104/pp.114.237529.
  7. 6.Krizek BA, Fletcher JC. Molecular mechanisms of flower development: an armchair guide. Nat Rev Genet. 2005;6(9):688-698. doi: 10.1038/nrg1675. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/nrg1675.
  8. 7.Coen ES, Meyerowitz EM. The war of the whorls: genetic interactions controlling flower development. Nature. 1991;353:31-37. doi: 10.1038/353031a0. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/353031a0.
  9. 8.Wellmer F, Graciet E, Riechmann JL. Specification of floral organs in Arabidopsis. J Exp Bot. 2014;65(1):1-9. doi: 10.1093/jxb/ert385. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jxb/ert385.
  10. 9.Wake DB, Wake MH, Specht CD. Homoplasy: from detecting pattern to determining process and mechanism of evolution. Science. 2011;331(6020):1032-1035. doi: 10.1126/science.1188545. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1126/science.1188545.
  11. 10.Huang TB, Irish VF. Gene networks controlling petal organogenesis. J Exp Bot. 2016;67(1):61-68. doi: 10.1093/jxb/erv444. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jxb/erv444.
  12. 11.Lu B, Chen L, Hao J, Zhang Y, Huang J. Comparative transcription profiles reveal that carbohydrates and hormone signalling pathways mediate flower induction in Juglans sigillata after girdling. Industrial Crops and Products. 2020;153:112556. 10.1016/j.indcrop.2020.112556.. doi:10.1016/j.indcrop.2020.112556.
  13. 12.SACHS RM. Roles of photosynthesis and assimilate partitioning in flower initiation. Proceedings of Previous Easter Schools in Agricultural Science. 1987. doi: 10.1016/B978-0-407-00570-9.50028-4.. doi:10.1016/B978-0-407-00570-9.50028-4.
  14. Two New Oxysporone Derivatives from the Fermentation Broth of the Endophytic Plant Fungus Pestalotiopsis karstenii Isolated from Stems of Camellia sasanqua – PMC. Molecules (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/molecules17078554 · PMID: 22805506.
  15. 1.Strobel G.A. Endophytes as sources of bioactive products. Microbes Infect. 2003;5:535-544. doi: 10.1016/S1286-4579(03)00073-X. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/S1286-4579(03)00073-X.
  16. 2.Agarwal A.K., Chauhan S. A new species of the genus Pestalotiopsis from Indian soil. Indian Phytopathol. 1988;41:625-627. [Google Scholar].
  17. 3.Ding G., Qi Y., Liu S.L., Chen G.X. Photipyrones A and B, New pyrone derivatives from the plant endophytic fungus Pestalotiopsis photiniae. J. Antibiot. 2012;65:271-273. doi: 10.1038/ja.2012.14. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/ja.2012.14.
  18. 4.Yang X.L., Zhang J.Z., Luo D.Q. The taxonomy, Biology and chemistry of the fungal Pestalotiopsis genus. Nat. Prod. Rep. 2012;29:622-641. doi: 10.1039/c2np00073c. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1039/c2np00073c.
  19. 5.Li J., Wu X.F., Ding G., Feng Y., Jiang X.J., Guo L.D., Che Y.S. α-Pyrones and pyranes from the plant pathogenicfungus Pestalotiopsis scirpina. Eur. J. Org. Chem. 2012:2445-2452. [Google Scholar].
  20. 6.Li J., Li L., Si Y., Jiang X.L., Che G.Y. Virgatolides A-C, Benzannulated spiroketals from the plant endophytic fungus Pestalotiopsis virgatula. Org. Lett. 2011;13:2670-2673. doi: 10.1021/ol200770k. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/ol200770k.
  21. 7.Yang X.L., Zhang S. Dihydroberkleasmin A: A New Eremophilane Sesquiterpenoid from the fermentation broth of the plant endophytic fungus Pestalotiopsis photiniae. Molecules. 2011;16:1910-1916. doi: 10.3390/molecules16021910. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/molecules16021910.
  22. 8.Yang X.L., Zhang S. Eremophilane-type Sesquiterpenoids from the fermentation broth of plant endophytic fungus Pestalotiopsis photiniae isolated from the Chinese podocarpaceae plant Podocarpus macrophyllus. Helv. Chim. Acta. 2011;94:1463-1468. doi: 10.1002/hlca.201100010. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/hlca.201100010.
  23. 9.Luo D.Q., Deng H.Y. Oleanane-type triterpenoids from endophytic fungus Pestalotiopsis clavispora isolated from the Chinese mangrove plant Bruguiera sexangula. Helv. Chim. Acta. 2011;94:1041-1047. doi: 10.1002/hlca.201000404. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1002/hlca.201000404.
  24. 10.Ding G., Zhang F. Pestaloquinols A and B, isoprenylated epoxyquinols from Pestalotiopsis sp. J. Nat. Prod. 2011;74:286-291. doi: 10.1021/np100723t. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/np100723t.
  25. 11.Davis R.A., Carroll A.R. Pestalactams A-C: Novel caprolactams from the endophytic fungus Pestalotiopsis sp. Org. Biomol. Chem. 2010;8:1785-1790. doi: 10.1039/b924169h. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1039/b924169h.
  26. 12.Fu S.B., Yang J.S. Multihydroxylation of ursolic acid by Pestalotiopsis microspora isolated from the medicinal plant Huperzia serrata. Fitoterapia. 2011;82:1057-1061. doi: 10.1016/j.fitote.2011.06.009. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.fitote.2011.06.009.
  27. Isolation of eugenyl β-primeveroside from Camellia sasanqua and its anticancer activity in PC3 prostate cancer cells – PMC. Journal of food and drug analysis. DOI: 10.1016/j.jfda.2015.06.005 · PMID: 28911392.
  28. 1. Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2012. CA Cancer J Clin. 2012;62:10-29. doi: 10.3322/caac.20138. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3322/caac.20138.
  29. 2. Bommareddy A, Eggleston W, Prelewicz S, Antal A, Witczak Z, McCune DF, et al. Chemoprevention of prostate cancer by major dietary phytochemicals. Anticancer Res. 2013;33:4163-74. [PubMed] [Google Scholar].
  30. 3. Bandyopadhyay P, Ghosh AK, Ghosh C. Recent developments on polyphenol-protein interactions: Effects on tea and coffee taste, antioxidant properties and the digestive system. Food Funct. 2012;3:592-605. doi: 10.1039/c2fo00006g. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1039/c2fo00006g.
  31. 4. Lee CP, Shih PH, Hsu CL, Yen GC. Hepatoprotection of tea seed oil (Camellia oleifera Abel.) against CCl4-induced oxidative damage in rats. Food Chem Toxicol. 2007;45:888-95. doi: 10.1016/j.fct.2006.11.007. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.fct.2006.11.007.
  32. 5. Astill C, Birch MR, Dacombe C, Humphrey PG, Martin PT. Factors affecting the caffeine and polyphenol contents of black and green tea infusions. J Agric Food Chem. 2001;49:5340-7. doi: 10.1021/jf010759+. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/jf010759.
  33. 6. Pan MH, Chiou YS, Wang YJ, Ho CT, Lin JK. Multistage carcinogenesis process as molecular targets in cancer chemoprevention by epicatechin-3-gallate. Food Funct. 2011;2:101-10. doi: 10.1039/c0fo00174k. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1039/c0fo00174k.
  34. 7. Sang S, Lambert JD, Ho CT, Yang CS. The chemistry and biotransformation of tea constituents. Pharmacol Res. 2011;64:87-99. doi: 10.1016/j.phrs.2011.02.007. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.phrs.2011.02.007.
  35. 8. Lin X, Chen Z, Zhang Y, Gao X, Luo W, Li B. Interactions among chemical components of Cocoa tea (Camellia ptilophylla Chang), a naturally low caffeine-containing tea species. Food Funct. 2014;5:1175-85. doi: 10.1039/c3fo60720h. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1039/c3fo60720h.
  36. 9. Cimpoiu C, Cristea VM, Hosu A, Sandru M, Seserman L. Antioxidant activity prediction and classification of some teas using artificial neural networks. Food Chem. 2011;127:1323-8. doi: 10.1016/j.foodchem.2011.01.091. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.foodchem.2011.01.091.
  37. 10. Lin JN, Lin HY, Yang NS, Li YH, Lee MR, Chuang CH, et al. Chemical constituents and anticancer activity of yellow camellias against MDA-MB-231 human breast cancer cells. J Agric Food Chem. 2013;61:9638-44. doi: 10.1021/jf4029877. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/jf4029877.
  38. 11. Yu Y, Deng Y, Lu BM, Liu YX, Li J, Bao JK. Green tea catechins: a fresh flavor to anticancer therapy. Apoptosis. 2014;19:1-18. doi: 10.1007/s10495-013-0908-5. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s10495-013-0908-5.
  39. 12. Syu KY, Lin CL, Huang HC, Lin JK. Determination of theanine, GABA, and other amino acids in green, oolong, black, and Puerh teas with dabsylation and high-performance liquid chromatography. J Agric Food Chem. 2008;56:7637-43. doi: 10.1021/jf801795m. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/jf801795m.
  40. Transcriptome analysis reveals the potential mechanism of the response to scale insects in Camellia sasanqua Thunb – PMC. BMC genomics. DOI: 10.1186/s12864-024-09980-y · PMID: 38267855.
  41. 1.Borden M, Dale A. Native and edible ornamental plant congeners enhance ecosystem services through key pest avoidance and multifunctionality in residential landscapes. Environ Entomol. 2020;49:1206-1213. doi: 10.1093/ee/nvaa099. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/ee/nvaa099.
  42. 2.Naskar S, Roy C, Ghosh S, Mukhopadhyay A, Hazarika LK, Chaudhuri KR, et al. Elicitation of biomolecules as host defense arsenals during insect attacks on tea plants (Camellia sinensis (L.) Kuntze) Appl Microbiol Biotechnol. 2021;105:7187-7199. doi: 10.1007/s00253-021-11560-z. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00253-021-11560-z.
  43. 3.Šimala M, Pintar M, Markotić V. Aleurocanthus camelliae Kanmiya & Kasai, 2011 (Hemiptera: Aleyrodidae), a newly intercepted whitefly species in Croatia. Nat Croat. 2023;32(2):432-437. doi: 10.20302/NC.2023.32.28. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.20302/NC.2023.32.28.
  44. 4.Kakoti B, Deka B, Roy S, Babu A. The scale insects: Its status, biology, ecology and management in tea plantations. Frontiers. 2023;7:17-15. doi: 10.3389/finsc.2022.1048299. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3389/finsc.2022.1048299.
  45. macho ER, Chong JH. General biology and current management approaches of soft scale pests (Hemiptera: Coccidae) J Integrated Pest Manage. 2015;6(1):17-22. doi: 10.1093/jipm/pmv016. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/jipm/pmv016.
  46. 6.Shangguan XX, Zhang J, Liu BF, Zhao Y, Wang HY, Wang ZZ, Guo JP, Yu DZ, He GC. A mucin-like protein of planthopper is required for feeding and induces immunity response in plants. Plant Physiol Prev. 2017;14:1-40. doi: 10.1104/pp.17.00755. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1104/pp.17.00755.
  47. 7.Erb M, Reymond P. Molecular interactions between plants and insect herbivores. Plant Biological. 2019;70:4.1-4.31 [DOI] [PubMed].
  48. en CY, Mao YB. Research advances in plant-insect molecular interaction. F1000 Research. 2020;9:198. [DOI] [PMC free article] [PubMed].
  49. 9.Ye J, Zhang L, Zhang X, Wu X, Fang R. Plant defense networks against insect-borne pathogens. Trends Plant Sci. 2021;26:272-287. doi: 10.1016/j.tplants.2020.10.009. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tplants.2020.10.009.
  50. 10.He Z, Webster S, He SY. Growth-defense trade-offs in plants. Curr Biol. 2022;32(12):R634-R639. doi: 10.1016/j.cub.2022.04.070. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.cub.2022.04.070.
  51. 11.Bhavanam S, Stout M. Seed Treatment with jasmonic acid and methyl jasmonate induces resistance to insects but reduces plant growth and yield in rice Oryza sativa. Front Plant Sci. 2021;12:1-11. [DOI] [PMC free article] [PubMed].
  52. 12.He J, Liu YQ, Duan MJ, Liu MJ, Shen ZJ, Yang CY, Qiu ZY, Liu DM, Wen PZ, Huang J, Fan DJ, Xiao SZ, Xin YY, Chen XN, Jiang L, Wang HY, Yuan LP, Wang JM. An R2R3 MYB transcription factor confers brown planthopper resistance by regulating the phenylalanine ammonia-lyase pathway in rice. National Acad Sci. 2020;1:1-7. doi: 10.1073/pnas.1902771116. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.1902771116.
  53. Bruno Nunez. Le Camellia sasanqua : Le camélia à fleurs d’automne. 2020.
  54. Camélia : conseils et entretien | Truffaut.
  55. Cindy & Loïc – Autonomie Jardin. Tout savoir sur le camélia : Plantation, exposition et floraison. 2025.
  56. La Maison du Camelia. Le camélia d’automne : le Camellia sasanqua en détail. 2026.
ERIC
ERIC
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.

Read More

Related Articles

LAISSER UN COMMENTAIRE

S'il vous plaît entrez votre commentaire!
S'il vous plaît entrez votre nom ici