Le lombricomposteur n’est pas une poubelle miniature : c’est un écosystème peu tolérant au sel, à la fermentation et aux contaminants. Les publications scientifiques de 2025 et de janvier 2026 précisent où le bac peut dérailler.
Les vers épigés, notamment Eisenia fetidainterviennent après le début de la décomposition microbienne. Leur activité dépend donc de plusieurs paramètres liés : une nourriture humide, une matière carbonée sèche, de l’oxygène, une température adaptée et des apports proportionnés à la colonie.
Dans un jardin bio, un déchet végétal n’est pas automatiquement un bon apport, et un liquide brun n’est pas automatiquement un engrais. Le label AB encadre une production agricole certifiée; il ne transforme pas, à lui seul, le contenu d’un lombricomposteur domestique en produit certifié.
Le ver est dans le bac, pas dans la boule de cristal
Photo de Lara Jameson sur Pexels.
Dans l’article scientifique Nano-biochar regulates phage-host interactions, reducing antibiotic resistance genes in vermicomposting systemspublié le 26 août 2025 dans Proceedings of the National Academy of Sciencesles chercheurs ont étudié les relations entre bactéries, phages et gènes de résistance aux antibiotiques dans des systèmes de lombricompostage. Ils ont combiné métagénomique, viromique et validations en laboratoire.
Les phages lytiques dominaient dans le lombricompost et pouvaient limiter certaines bactéries résistantes. Dans l’intestin des vers, les phages lysogènes étaient davantage associés au transfert de gènes de résistance. Le nano-biochar a modifié ces interactions et réduit la transmission de certains gènes dans les conditions expérimentales.
Cette publication concerne un dispositif de recherche et non un bac de cuisine. Elle ne justifie donc pas l’ajout de nano-biochar à un lombricomposteur domestique. Le geste utile reste beaucoup moins spectaculaire : protéger le milieu de vie des vers au lieu d’empiler les déchets en attendant un miracle.
Sel de la terre, sel de la galère
Photo de Ruandom Zhong sur Pexels.
L’article Effects of Salt Stress on Earthworm Function and Compost Quality During Vermicomposting of Kitchen Wastespublié dans Bioengineering avec une date de collection en janvier 2026, compare un groupe soumis à 1,5 % de sel et un groupe sans ajout de sel.
Dans le groupe salé, la mortalité des vers a atteint 24,33 %. Leur nombre et leur poids ont diminué, tandis que la sécrétion de mucus a chuté de 82,6 %. La salinité a aussi réduit de 23,7 % l’indice d’humification et de 41,2 % l’indice bêta-alpha. Les communautés microbiennes ont changé : l’abondance des Ascomycota a baissé de 37,5 %, celle des Bacteroidetes a augmenté de 58,3 % et celle des Proteobacteria a diminué de 72,3 %.
Ces résultats correspondent à une concentration précise et à un essai contrôlé. Ils ne donnent pas un seuil universel pour chaque bac, chaque espèce ou chaque mélange. Ils rendent toutefois le tri très concret : sauces, bouillons concentrés, aliments en saumure et restes très salés n’ont pas leur place dans un lombricomposteur domestique. Les vers ne négocient pas avec la salière.
Le bac mouillé fait son cinéma
Photo de SHVETS production sur Pexels.
Un substrat doit rester humide, sans devenir une boue compacte. Une matière qui dégouline, colle aux doigts ou dégage une odeur aigre indique souvent un excès d’eau, un manque d’air ou une accumulation d’apports frais. Du carton brun non traité, des feuilles mortes sèches ou du papier non glacé peuvent absorber une partie de cette humidité.
Les vers qui remontent massivement, tentent de s’échapper ou se regroupent sur les parois signalent aussi un milieu qui ne leur convient plus. La chaleur, l’acidité, le manque d’oxygène et une nourriture trop abondante font partie des causes possibles.
Pour corriger un bac trop humide, on avance sans retourner tout le contenu :
réduire ou suspendre les apports frais pendant quelques jours;
ajouter du carton brun sec, finement déchiré;
décompacter doucement la couche supérieure pour laisser circuler l’air;
reprendre avec de petites quantités lorsque l’odeur et la texture se stabilisent.
Au démarrage, une petite colonie ne peut pas traiter d’un coup le volume de biodéchets produit par un foyer. Les premiers apports restent donc modestes, les morceaux petits et la matière sèche visible. Nourrir un jeune bac comme un buffet à volonté, c’est rater en beauté son acclimatation.
Plastique et arsenic, le duo qui ne passe pas
L’étude Plasmid-Mediated Spread of Antibiotic Resistance by Arsenic and Microplastics During Vermicompostingpubliée en décembre 2025 dans Antibioticsporte sur du fumier laitier soumis à de l’arsenic, à des microplastiques en polyéthylène téréphtalate, ou aux deux. Les chercheurs ont suivi les plasmides, des éléments génétiques capables de transporter des gènes entre bactéries.
Dans cet essai contrôlé, les microplastiques ont favorisé certains plasmides conjugatifs et mobilisables. L’arsenic a augmenté plusieurs types de plasmides. L’exposition combinée a accru l’abondance totale de gènes de résistance aux antibiotiques, avec un enrichissement décrit comme synergique alors que la quantité totale de plasmides ne changeait pas.
Le protocole ne signifie pas qu’un fragment de plastique présent dans un bac domestique produira automatiquement le même résultat. Il rappelle une limite nette : le lombricompostage ne neutralise pas tous les polluants. On retire les plastiques visibles, on écarte les matières d’origine incertaine et on ne destine pas un compost potentiellement contaminé aux légumes comestibles.
Du varech au vermicompost, la mer monte en diversité
Photo de Rodrigo Curi sur Unsplash.
L’article Taxonomic and Functional Dynamics of Bacterial Communities During Drift Seaweed Vermicompostingpublié en janvier 2025 dans Microorganismsa suivi l’évolution des communautés bactériennes pendant le lombricompostage d’algues échouées.
La diversité taxonomique bactérienne a augmenté en moyenne de 32 % entre les temps d’échantillonnage. Les chercheurs ont aussi observé un enrichissement de fonctions associées à la santé du sol, à la croissance des plantes, à la synthèse d’acides aminés et de phytohormones, ainsi qu’à la dégradation du bisphénol.
Ce résultat décrit un potentiel microbien dans les conditions de l’étude. Il ne transforme pas toutes les algues échouées en amendement prêt à l’emploi. L’espèce, le traitement préalable et les conditions du bac comptent. La nature reprend ses droits, mais elle ne fournit pas toujours l’analyse de laboratoire avec le paquet cadeau.
Le menu des vers ne mérite pas une émission de cuisine
Photo de Letícia Alvares sur Pexels.
Les apports courants comprennent les épluchures de légumes, les restes végétaux non salés et les feuilles mortes. On les coupe finement et on les alterne avec une matière carbonée sèche. Cette combinaison limite les excès d’humidité et évite de présenter aux vers une montagne de déchets frais qu’ils ne peuvent pas traiter.
On écarte la viande, le poisson, les graisses, les produits laitiers, les plats cuisinés salés et les liquides de cuisson. Les agrumes, l’ail et l’oignon peuvent aussi déséquilibrer un petit bac lorsqu’ils arrivent en grande quantité, surtout au démarrage. Les noyaux, les gros morceaux ligneux et les épluchures épaisses se dégradent lentement.
La quantité dépend du nombre de vers, du volume du bac, de la température et de la finesse des morceaux. Une règle fixe par foyer sonne creux : un bac installé depuis peu ne fonctionne pas comme une colonie déjà active. On augmente les apports seulement lorsque les précédents ont nettement diminué.
Récolter sans raconter de salades
Photo de Kari Alfonso sur Pexels.
Le lombricompost destiné au potager s’emploie comme amendement organique. On attend que les apports frais aient largement diminué et que la matière soit sombre, grumeleuse et dépourvue d’odeur de fermentation. Le calendrier seul ne suffit pas, car la vitesse de transformation varie selon la colonie, la température et le contenu du bac.
Le produit solide mûr est plus simple à utiliser que le liquide récupéré au fond. Ce liquide n’a pas une composition constante d’un bac à l’autre et ne doit pas être présenté comme un engrais standardisé. Avant toute utilisation, on corrige d’abord l’humidité et les odeurs du lombricomposteur.
Un bon lombricompostage ne cherche pas à faire disparaître les déchets le plus vite possible : il maintient un milieu où les vers travaillent sans sel, sans fermentation et sans pollution cachée. Après ça, qui a encore envie de leur servir une soupe salée?
Sources et références scientifiques
Nano-biochar regulates phage-host interactions, reducing antibiotic resistance genes in vermicomposting systems – PMC. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. DOI: 10.1073/pnas.2511986122 · PMID: 40838886.
1.Zhang J., et al., Viral communities contribute more to the lysis of antibiotic-resistant bacteria than the transduction of antibiotic resistance genes in anaerobic digestion revealed by metagenomics. Environ. Sci. Technol. 58, 2346-2359 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
2.Wang J., et al., Supercarriers of antibiotic resistome in a world’s large river. Microbiome 10, 111 (2022). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
3.Liu W., et al., Temporal dynamics and contribution of phage community to the prevalence of antibiotic resistance genes in a full-scale sludge anaerobic digestion plant. Environ. Sci. Technol. 58, 6296-6304 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
4.Yi Liang X., et al., Giant viruses as reservoirs of antibiotic resistance genes. Nat. Commun. 15, 7536 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
5.Shi Z., et al., Viral and bacterial community dynamics in food waste and digestate from full-scale biogas plants. Environ. Sci. Technol. 58, 13010-13022 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
6.Hu J., et al., Characterizing the gut phageome and phage-borne antimicrobial resistance genes in pigs. Microbiome 12, 102 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
ng A., et al., Synoptic variation drives genetic diversity and transmission mode of airborne DNA viruses in urban space. Adv. Sci. 11, 2404512 (2024). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
9.Du S., et al., Viral communities suppress the earthworm gut antibiotic resistome by lysing bacteria on a national scale. Environ. Sci. Technol. 58, 13961-13972 (2024). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
lero-Cáceres W., Ye M., Balcázar J. L., Bacteriophages as environmental reservoirs of antibiotic resistance. Trends Microbiol. 27, 570-577 (2019). [DOI] [PubMed] [Google Scholar].
11.Warwick-Dugdale J., et al., Host-hijacking and planktonic piracy: How phages command the microbial high seas. Virol. J. 16, 1-13 (2019). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
12.Luo X.-Q., et al., Viral community-wide auxiliary metabolic genes differ by lifestyles, habitats, and hosts. Microbiome 10, 190 (2022). [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar].
Effects of Salt Stress on Earthworm Function and Compost Quality During Vermicomposting of Kitchen Wastes – PMC. Bioengineering (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/bioengineering13010038 · PMID: 41595970.
1.Ding Y., Zhao J., Liu J.W., Zhou J., Cheng L., Zhao J., Shao Z., Iris C., Pan B., Li X. A review of China’s municipal solid waste (MSW) and comparison with international regions: Management and technologies in treatment and resource utilization. J. Clean. Prod. 2021;293:126144.1-126144.20. doi: 10.1016/j.jclepro.2021.126144. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jclepro.2021.126144.
2.Miao S., Wei Y., Chen J., Wei X. Extraction methods, physiological activities and high value applications of tea residue and its active components: A review. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2023;63:12150-12168. doi: 10.1080/10408398.2022.2099343. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/10408398.2022.2099343.
3.Wang Z., Wang S., Li H., Lu Y., Zhang B., Zhang H., Zhang S. Synergistic effects of economic benefits, resource conservation and carbon mitigation of kitchen waste recycling from the perspective of carbon neutrality. Resour. Conserv. Recy. 2023;199:11. doi: 10.1016/j.resconrec.2023.107262. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.resconrec.2023.107262.
4.Domínguez J., Aira M., Kolbe A.R., Gómez-Brandón M., Pérez-Losadaz M. Changes in the composition and function of bacterial communities during vermicomposting may explain beneficial properties of vermicompost. Sci. Rep. 2019;9:9657. doi: 10.1038/s41598-019-46018-w. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41598-019-46018-w.
5.Zhang H., Fu Z., Guan D., Zhao J., Wang Y., Zhang Q., Xie J., Sun Y., Guo L., Wang D. A comprehensive review on food waste anaerobic co-digestion: Current situation and research prospect. Process. Saf. Environ. 2023;179:546-558. doi: 10.1016/j.psep.2023.09.030. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.psep.2023.09.030.
6.Xia H., Huang W., Huang K., Yang R., Li T., Mao H. Effects of salt content on degradation and transformation performance of kitchen waste during vermicomposting. J. Environ. Chem. Eng. 2025;13:117884. doi: 10.1016/j.jece.2025.117884. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jece.2025.117884.
7.Ai F., Zheng S., Zeng C., Li B., Zhang K., Zhang C., Li Q., Kang L. Soil ecosystem multifunctionality and growth characteristics of Leymus chinensis were enhanced after sandy soil amendment with vermicompost and soil conditioner in soil-plant-microbe system. Environ. Technol. Innov. 2025;39:104226. doi: 10.1016/j.eti.2025.104226. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.eti.2025.104226.
8.Helmy K.G., Abu-Hussien S.H. Root Rot Management in Common Bean (Phaseolus vulgaris L.) Through Integrated Biocontrol Strategies using Metabolites from Trichoderma harzianum, Serratia marcescens, and Vermicompost Tea. Microb. Ecol. 2024;87:94. doi: 10.1007/s00248-024-02400-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00248-024-02400-4.
9.Xu X., Wang R., Guo Y., Li X., Zhu Z., Ouyang C., Zhao Y., Zhou T. Effects of exogenous additives on thermophilic co-composting of food waste digestate: Coupled response of enhanced humification and suppressed gaseous emissions. Energy Environ. Sustain. 2025;1:100046. doi: 10.1016/j.eesus.2025.100046. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.eesus.2025.100046.
10.Fang Z., Hodson M.E., Hu C.-J., Li W.-J., Li J., Monroy A.B., Tong L., Xiao X. Combined toxicity of polyethylene microplastics and soil salinization to earthworms is generally antagonistic or additive. J. Hazard. Mater. 2025;495:138843. doi: 10.1016/j.jhazmat.2025.138843. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jhazmat.2025.138843.
11.Raiesi F., Motaghian H.R., Nazarizadeh M. The sublethal lead (Pb) toxicity to the earthworm Eisenia fetida (Annelida, Oligochaeta) as affected by NaCl salinity and manure addition in a calcareous clay loam soil during an indoor mesocosm experiment. Ecotox. Environ. Saf. 2020;190:110083. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.110083. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.ecoenv.2019.110083.
12.Li S., Wang C., Huang H., Zhao L., Cao J., Wang B., Ding H. Vermicompost and Azotobacter chroococcum increase nitrogen retention in saline-alkali soil and nitrogen utilization of maize. Appl. Soil. Ecol. 2024;201:105512. doi: 10.1016/j.apsoil.2024.105512. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.apsoil.2024.105512.
Plasmid-Mediated Spread of Antibiotic Resistance by Arsenic and Microplastics During Vermicomposting – PMC. Antibiotics (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/antibiotics14121230 · PMID: 41463733.
1.Han N.-N., Wang X.-P., Jin J.-A., Li W.-H., Yang W.-Y., Fan N.-S., Jin R.-C. Underrated risk of antibiotic resistance genes dissemination mediated by bioaerosols released from anaerobic biological wastewater treatment system. Water Res. 2025;279:123463. doi: 10.1016/j.watres.2025.123463. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.watres.2025.123463.
stañeda-Barba S., Top E.M., Stalder T. Plasmids, a molecular cornerstone of antimicrobial resistance in the One Health era. Nat. Rev. Microbiol. 2023;22:18-32. doi: 10.1038/s41579-023-00926-x. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41579-023-00926-x.
e Y., Yang Y., Xu X., Břinda K., Polz M.F., Hanage W.P., Zhang T. Conjugative plasmids interact with insertion sequences to shape the horizontal transfer of antimicrobial resistance genes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2021;118:e2008731118. doi: 10.1073/pnas.2008731118. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.2008731118.
ng J., Zhang W., Zhang L., Qin C., Wang H., Ling W. Micro-interfacial behavior of antibiotic-resistant bacteria and antibiotic resistance genes in the soil environment: A review. Environ. Int. 2024;191:108972. doi: 10.1016/j.envint.2024.108972. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.envint.2024.108972.
5.Enebe M.C., Erasmus M. Vermicomposting technology-A perspective on vermicompost production technologies, limitations and prospects. J. Environ. Manag. 2023;345:118585. doi: 10.1016/j.jenvman.2023.118585. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jenvman.2023.118585.
6.Mu M., Yang F., Han B., Ding Y., Zhang K. Insights into the panorama of antibiotic resistome in cropland soils amended with vermicompost in China. Sci. Total Environ. 2023;868:161658. doi: 10.1016/j.scitotenv.2023.161658. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.scitotenv.2023.161658.
7.Huang K., Xia H., Zhang Y., Li J., Cui G., Li F., Bai W., Jiang Y., Wu N. Elimination of antibiotic resistance genes and human pathogenic bacteria by earthworms during vermicomposting of dewatered sludge by metagenomic analysis. Bioresour. Technol. 2020;297:122451. doi: 10.1016/j.biortech.2019.122451. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2019.122451.
ng S., Li P., Wu Y., Tang H., Cheng S., Thunders M., Qiu J., Li Y. Eco-risk management of tylosin fermentation residues using vermicomposting. J. Environ. Manag. 2022;303:114126. doi: 10.1016/j.jenvman.2021.114126. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jenvman.2021.114126.
9.Li Z., Yang F., Yang M., Yan R., Zhang K. The Mechanisms of Tetracycline in Shaping Antibiotic Resistance Gene Dynamics in Earthworm Casts During Vermicomposting. Toxics. 2025;13:273. doi: 10.3390/toxics13040273. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/toxics13040273.
10.Tang K.H.D. Microplastics in agricultural soils in China: Sources, impacts and solutions. Environ. Pollut. 2023;322:121235. doi: 10.1016/j.envpol.2023.121235. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.envpol.2023.121235.
11.Yang X., Li Q., Tang Z., Zhang W., Yu G., Shen Q., Zhao F.-J. Heavy metal concentrations and arsenic speciation in animal manure composts in China. Waste Manag. 2017;64:333-339. doi: 10.1016/j.wasman.2017.03.015. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.wasman.2017.03.015.
12.Zhao X., Shen J.-P., Zhang L.-M., Du S., Hu H.-W., He J.-Z. Arsenic and cadmium as predominant factors shaping the distribution patterns of antibiotic resistance genes in polluted paddy soils. J. Hazard. Mater. 2020;389:121838. doi: 10.1016/j.jhazmat.2019.121838. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jhazmat.2019.121838.
Taxonomic and Functional Dynamics of Bacterial Communities During Drift Seaweed Vermicomposting – PMC. Microorganisms. DOI: 10.3390/microorganisms13010030 · PMID: 39858798.
1.Paine E.R., Schmid M., Boyd P.W., Diaz-Pulido G., Hurd C.L. Rate and fate of dissolved organic carbon release by seaweeds: A missing link in the coastal ocean carbon cycle. J. Phycol. 2021;57:1375-1391. doi: 10.1111/jpy.13198. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/jpy.13198.
2.Illera-Vives M., Seoane Labandeira S., Fernández-Labrada M., López-Mosquera M.E. Chapter 19, Agricultural uses of seaweed. In: Torres M.D., Kraan S., Dominguez H., editors. Sustainable Seaweed Technologies. Elsevier; Amsterdam, The Netherlands: 2020. pp. 591-612. (Advances in Green and Sustainable Chemistry). [Google Scholar].
3.Butt K.R., Méline C., Pérès G. Marine macroalgae as food for earthworms: Growth and selection experiments across ecotypes. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2020;27:33493-33499. doi: 10.1007/s11356-020-07666-y. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11356-020-07666-y.
4.Pei B., Zhang Y., Liu T., Cao J., Ji H., Hu Z., Wu X., Wang F., Lu Y., Chen N., et al. Effects of seaweed fertilizer application on crops’ yield and quality in field conditions in China-a meta-analysis. PLoS ONE. 2024;19:e0307517. doi: 10.1371/journal.pone.0307517. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1371/journal.pone.0307517.
5.Villares R., Fernández-Lema E., López-Mosquera E. Seasonal variations in concentrations of macro- and micronutrients in three species of brown seaweed. Bot. Mar. 2013;56:49-61. doi: 10.1515/bot-2012-0114. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1515/bot-2012-0114.
6.Xie C., Lee Z.J., Ye S., Barrow C.J., Dunshea F.R., Suleria H.A.R. A review on seaweeds and seaweed-derived polysaccharides: Nutrition, chemistry, bioactivities, and applications. Food Rev. Int. 2024;40:1312-1347. doi: 10.1080/87559129.2023.2212055. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1080/87559129.2023.2212055.
olu-Ajayi A.O., van der Meer I.M., van der Werf A., Karlova R. The power of seaweeds as plant biostimulants to boost crop production under abiotic stress. Plant Cell Environ. 2022;45:2537-2553. doi: 10.1111/pce.14391. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/pce.14391.
8.Santinon C., Ochi D., Beppu M.M., Vieira M.G.A. Chemical modifications in the structure of seaweed polysaccharides as a viable antimicrobial application: A current overview and future perspectives. Algal Res. 2022;66:102796. doi: 10.1016/j.algal.2022.102796. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.algal.2022.102796.
9.Dang B.-T., Ramaraj R., Huynh K.-P.-H., Le M.-V., Tomoaki I., Pham T.-T., Hoang Luan V., Thi Le Na P., Tran D.P.H. Current application of seaweed waste for composting and biochar: A review. Bioresour. Technol. 2023;375:128830. doi: 10.1016/j.biortech.2023.128830. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2023.128830.
10.Domínguez J. State of the art and new perspectives on vermicomposting research. In: Edwards C.A., editor. Earthworm Ecology. 2nd ed. CRC Press; Boca Ratón, FL, USA: 2004. pp. 401-442. [Google Scholar].
11.Patón D., García-Gómez J.C., Loring J., Torres A. Composting the invasive toxic seaweed Rugulopteryx okamurae using five invertebrate species, and a mini-review on composting macroalgae. Waste Biomass Valor. 2023;14:167-184. doi: 10.1007/s12649-022-01849-z. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s12649-022-01849-z.
12.Ananthavalli R., Ramadas V., John Paul J.A.J., Karunai Selvi B., Karmegam N. Seaweeds as bioresources for vermicompost production using the earthworm, Perionyx excavatus (Perrier) Bioresour. Technol. 2019;275:394-401. doi: 10.1016/j.biortech.2018.12.091. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2018.12.091.
Bruno Nunez. Tout n’est pas si rose dans le lombricompostage!. 2014.
Karen Chevallier. Tout savoir sur le lombricompostage : guide complet pour débuter. 2025.
Lombricompostage : tout ce qu'il faut savoir pour se lancer 🪱.
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.
