Curcuma alismatifolia : l’été en bractées, l’hiver au sec

Le Curcuma alismatifolia, ou tulipe de Siam, apporte des bractées roses, magenta, violettes ou blanches dès mai-juin. En pot, la floraison tient surtout à trois réglages : lumière tamisée, chaleur régulière et arrosage sans eau stagnante.

La tulipe cache bien son jeu de rhizome

a close up of a pink and yellow flower
Photo de David Clode sur Unsplash.

Le Curcuma alismatifolia est une vivace rhizomateuse de la famille des Zingibéracées, comme le gingembre et le curcuma alimentaire. L’espèce est originaire de Thaïlande, du Cambodge et de l’Asie du Sud-Est. Sous les climats aux hivers froidson la cultive surtout en pot, avec une sortie au jardin pendant la belle saison.

La partie colorée n’est pas une corolle classique. Il s’agit d’une inflorescence en épi portée par une hampe, composée de bractées qui entourent les petites fleurs véritables. L’épi mesure environ 20 à 25 cm et la touffe peut approcher 1 m dans de bonnes conditions. La floraison commence généralement en mai ou en juin et peut durer jusqu’à la fin de l’été.

La couleur dépend du cultivar. Une publication d’aBIOTECH parue en 2022 a étudié les mécanismes génétiques liés à la pigmentation des bractées chez le Curcuma alismatifolia. Les chercheurs ont notamment identifié des gènes associés aux voies de synthèse des anthocyanes et de la chlorophylle. Cette étude éclaire la couleur des bractées, pas la manière de forcer une plante à fleurir.

Pour l’achat, le nom du cultivar compte donc autant que celui de l’espèce. Et pas question de confondre cette plante ornementale avec Curcuma longacultivé pour son rhizome utilisé comme épice.

Du soleil tamisé, sinon ça chauffe

A couple of potted plants sitting on top of a shelf
Photo de Barbara Burgess sur Unsplash.

Installez le pot dans un endroit très lumineux, mais protégé du soleil direct aux heures les plus chaudes. Une véranda claire, une serre légèrement ombrée ou une terrasse exposée au soleil du matin conviennent mieux qu’un emplacement plein sud sans filtre. Les feuilles peuvent brûler et les bractées perdre leur couleur sous une lumière trop brutale.

La plante apprécie une chaleur constante. En France métropolitaine, rentrez le pot avant les nuits froides et gardez-le à l’abri du gel. Dans l’extrême Sud-Est, une culture en pleine terre toute l’année peut être envisagée, mais ce cas reste lié au climat local.

À l’intérieur, éloignez le curcuma des radiateurs et des courants d’air froid. Une atmosphère humide lui convient. Lorsque l’air devient sec, la vaporisation du feuillage et une coupelle de billes d’argile humides peuvent aider, à condition que le fond du pot ne baigne jamais dans l’eau. Une feuille grillée, c’est rarement le résultat qu’on espérait.

Le pot prend son pied, le rhizome garde la tête froide

Hand holding bulb over a pot of soil
Photo de feey sur Unsplash.

Choisissez un contenant percé et un substrat qui évacue l’excès d’eau. Le rhizome apprécie un mélange léger et aéré, capable de retenir un peu d’humidité sans devenir compact. Le cache-pot demande une surveillance régulière : une réserve d’eau oubliée suffit à maintenir la base dans une humidité permanente.

Au printemps, enterrez le rhizome légèrement, autour de 3 à 4 cm, dans un terreau adapté aux plantes en pot. Tassez juste ce qu’il faut pour le maintenir, sans former une masse compacte autour des bourgeons. Le rempotage se fait à cette période, au moment où la plante quitte progressivement sa dormance.

Le sol reste un organisme vivant qu’on nourrit, mais dans un pot la circulation de l’air compte tout autant que la fertilité. Un substrat lourd retient l’eau autour du rhizome et ralentit son redémarrage. Pas franchement joli, ce curcuma qui végète dans une motte asphyxiée.

Arroser sans faire boire la tasse

a woman watering plants in a window sill
Photo de Annie Spratt sur Unsplash.

Pendant la croissance et la floraison, arrosez régulièrement, puis laissez la surface du substrat commencer à sécher avant de recommencer. L’eau doit humidifier la motte sans rester dans la soucoupe. La fréquence varie avec la chaleur, le volume du pot et la composition du terreau : une mesure fixe, comme un verre tous les deux jours, ignore tout cela.

Observez la plante et le substrat. En période chaude, les apports se rapprochent; dans une pièce fraîche, ils s’espacent. La météo adore saboter les calendriers bien rangés, et le pot placé au soleil du matin ne sèche pas comme celui qui reste sous serre.

Quand le feuillage jaunit puis sèche, réduisez les arrosages et arrêtez les apports réguliers une fois les tiges sèches. Le rhizome entre alors au repos dans un local frais et sec, à l’abri du gel. Arroser comme en pleine floraison à ce moment-là, c’est proposer une piscine à une plante qui dort.

Le calendrier a ses saisons, la météo ses caprices

green leaves
Photo de Priscilla Du Preez 🇨🇦 sur Unsplash.

Au printemps, le rhizome remonte sur scène

Au printemps, rempotez si le contenant est devenu trop étroit et reprenez l’arrosage progressivement lorsque la nouvelle pousse apparaît. Tant que le feuillage ne s’est pas déployé, la plante consomme peu d’eau. Gardez-la dans un emplacement lumineux et chaud, sans soleil direct agressif.

De mai à la fin de l’été, les bractées montent au créneau

À partir de mai ou de juin, les hampes florales apparaissent dans de bonnes conditions. Maintenez une humidité régulière et une lumière filtrée. La durée de la floraison dépend du climat, de la chaleur et du cultivar : sous un climat chaud, elle peut se prolonger plusieurs mois, tandis qu’en situation tempérée elle reste liée à la belle saison.

À l’automne, le feuillage tire sa révérence

Le jaunissement puis le dessèchement des feuilles annoncent la dormance. Rentrez alors le pot avant les nuits froides, cessez les arrosages réguliers et laissez le rhizome passer l’hiver au frais et au sec. Au printemps suivant, l’apparition d’une nouvelle pousse donnera le signal d’une reprise progressive.

Les couleurs ne tombent pas du ciel

Close-up of a tall pink flowering plant
Photo de Ingo Zöll sur Unsplash.

La sélection variétale explique en partie la diversité des bractées. Une étude publiée dans Scientific Reports en 2019 a comparé notamment les cultivars Chiang Mai Pink et UB Snow 701. Le travail a produit 62 105 unigenes et identifié 9 351 marqueurs EST-SSR potentiels. Parmi eux, 17 marqueurs ont montré une diversité génétique modérée dans l’échantillonnage étudié, qui comprenait plusieurs cultivars et espèces.

Ces données concernent la génétique et la sélection, pas le rendement d’une potée ni la durée exacte de sa floraison. Elles rappellent toutefois une règle simple : deux curcumas portant des bractées de couleurs différentes ne sont pas forcément interchangeables dans leur comportement. On note le cultivar, on observe la plante, puis on ajuste l’arrosage et l’exposition.

Le Curcuma alismatifolia demande finalement une routine assez nette : lumière tamisée, chaleur stable, terreau aéré, eau mesurée et repos hivernal respecté. On peut envoyer du lourd sur l’effet tropical avec un seul pot. Il suffit ensuite d’éviter de le transformer en marécage.

Sources et références scientifiques
  1. De novo assembly of transcriptomes, mining, and development of novel EST-SSR markers in Curcuma alismatifolia (Zingiberaceae family) through Illumina sequencing – PMC. Scientific reports. DOI: 10.1038/s41598-019-39944-2 · PMID: 30816255.
  2. 1.Taheri, S., Abdullah, T. L., Ahmad, Z. & Abdullah, N. A. P. Effect of acute gamma irradiation on Curcuma alismatifolia varieties and detection of DNA polymorphism through SSR marker. BioMed Res. Int. 2014 (2014). [DOI] [PMC free article] [PubMed].
  3. 2.Taheri S, et al. Mining and Development of Novel SSR Markers Using Next Generation Sequencing (NGS) Data in Plants. Molecules. 2018;23:399. doi: 10.3390/molecules23020399. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/molecules23020399.
  4. 3.Zheng X, et al. Development of microsatellite markers by transcriptome sequencing in two species of Amorphophallus (Araceae) BMC Genomics. 2013;14:490. doi: 10.1186/1471-2164-14-490. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/1471-2164-14-490.
  5. 4.Wang H, et al. Development and validation of simple sequence repeat markers from Arachis hypogaea transcript sequences. Crop J. 2018;6:172-180. [Google Scholar].
  6. 5.Wang Z, et al. Characterization and development of EST-derived SSR markers in cultivated sweetpotato (Ipomoea batatas) BMC Plant Biol. 2011;11:139. doi: 10.1186/1471-2229-11-139. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/1471-2229-11-139.
  7. 6.Zalapa JE, et al. Using next‐generation sequencing approaches to isolate simple sequence repeat (SSR) loci in the plant sciences. Am. J. Bot. 2012;99:193-208. doi: 10.3732/ajb.1100394. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3732/ajb.1100394.
  8. 7.Panda MK, Mohanty S, Subudhi E, Acharya L, Nayak S. Assessment of genetic stability of micropropagated plants of Curcuma longa L. by cytophotometry and RAPD analyses. Int. J. Integr. Biol. 2007;1:189-195. [Google Scholar].
  9. 8.Das A, Kesari V, Satyanarayana VM, Parida A, Rangan L. Genetic relationship of Curcuma species from Northeast India using PCR-based markers. Mol. Biotechnol. 2011;49:65-76. doi: 10.1007/s12033-011-9379-5. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s12033-011-9379-5.
  10. 9.Sigrist M, Pinheiro J, Azevedo Filho J, Zucchi M. Genetic diversity of turmeric germplasm (Curcuma longa; Zingiberaceae) identified by microsatellite markers. Genet. Mol. Res. 2011;10:419-428. doi: 10.4238/vol10-1gmr1047. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.4238/vol10-1gmr1047.
  11. 10.Siju S, et al. Development, characterization and utilization of genomic microsatellite markers in turmeric (Curcuma longa L.) Biochem. Syst. Ecol. 2010;38:641-646. [Google Scholar].
  12. 11.Syamkumar S, Sasikumar B. Molecular marker based genetic diversity analysis of Curcuma species from India. Sci. Hortic. 2007;112:235-241. [Google Scholar].
  13. 12.Taheri S, Abdullah T, Abdullah N, Ahmad Z. Genetic relationships among five varieties of Curcuma alismatifolia (Zingiberaceae) based on ISSR markers. Genet. Mol. Res. 2012;11:3069-3076. doi: 10.4238/2012.August.31.4. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.4238/2012.August.31.4.
  14. Effects of water-deficit stress and paclobutrazol on growth, relative water content, electrolyte leakage, proline content and some antioxidant changes in Curcuma alismatifolia Gagnep. cv. Chiang Mai Pink – PMC. Saudi journal of biological sciences. DOI: 10.1016/j.sjbs.2015.09.017 · PMID: 30294219.
  15. Abdul Jaleel C.A., Manivannan P., Sankar B., Kishorekumar A., Sankari S., Panneerselvam R. Paclobutrazol enhances photosynthesis and ajmalicine production in Catharanthus roseus. Process Biochem. 2007;42:1566-1570. [Google Scholar].
  16. Alscher R.G., Erturk N., Heath L.S. Role of superoxide dismutases (SODs) in controlling oxidative stress in plants. J. Exp. Bot. 2002;53:1331-1341. [PubMed] [Google Scholar].
  17. AOAC, 1995. Official Methods of Analysis of AOAC International: current through March 1995 Supplement. Washington, D.C..
  18. Arora A., Sairam R.K., Srivastava G.C. Oxidative stress and antioxidative system in plants. Curr. Sci. India. 2002;82:1227-1238. [Google Scholar].
  19. Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygens and dissipation of excess photons. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1999;50:601-639. doi: 10.1146/annurev.arplant.50.1.601. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1146/annurev.arplant.50.1.601.
  20. Barrs H.D., Weatherley P.E. A re-examination of the relative turgidity technique for estimating water deficits in leaves. Aust. J. Biol. Sci. 1962;15:413-428. [Google Scholar].
  21. Bates L.S., Waldren R.P., Teare I.C. Rapid determination of proline for water stress studies. Plant Soil. 1973;39:205-207. [Google Scholar].
  22. Burrows G.E., Boag T.S., Stewart W.P. Changes in leaf, stem, and root anatomy of Chrysanthemum cv. Lillian Hoek following paclobutrazol application. J. Plant Growth Regul. 1992;11:189-194. [Google Scholar].
  23. Contreras-Guzman E., Strong F.C. Determination of total tocopherol in grain products and commercial oils, with only slight saponification and by a new reaction with cupric ion. J. Agric. Food Chem. 1982;30:1109-1112. [Google Scholar].
  24. Deepa N., Kaur C., Singh B., Kapoor H.C. Antioxidant activity in some red sweet pepper cultivars. J. Food Comp. Anal. 2006;19:572-578. [Google Scholar].
  25. Fernandez J.A., Balenzategui L., Banon S., Franco J.A. Induction of drought tolerance by paclobutrazol and irrigation deficit in Phillyrea angustifolia during the nursery period. Sci. Hortic. 2006;107:277-283. [Google Scholar].
  26. Finaud J., Lac G., Filaire E. Oxidative stress: relationship with exercise training. Sports Med. 2006;36:327-359. doi: 10.2165/00007256-200636040-00004. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.2165/00007256-200636040-00004.
  27. Antioxidant Capacities and Total Phenolic Contents Enhancement with Acute Gamma Irradiation in Curcuma alismatifolia (Zingiberaceae) Leaves – PMC. International journal of molecular sciences. DOI: 10.3390/ijms150713077 · PMID: 25056545.
  28. 1.Finley J.W. Bioactive compounds and designer plant foods: The need for clear guidelines to evaluate potential benefits to human health. Chronica. Hotric. 2005;45:6-11. [Google Scholar].
  29. 2.Karimi E., Jaafar H.Z.E., Ahmad S. Antifungal, anti-inflammatory and cytotoxicity activities of three varieties of Labisiapumilabenth: From microwave obtained extracts. BMC Complement. Altern. Med. 2013;13:1-10. doi: 10.1186/1472-6882-13-20. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/1472-6882-13-20.
  30. 3.Oskoueian E., Abdullah N., Hendra R., Karimi E. Bioactive compounds, antioxidant, xanthine oxidase inhibitory, tyrosinase inhibitory and anti-inflammatory activities of selected agro-industrial by-products. Int. J. Mol. Sci. 2011;12:8610-8625. doi: 10.3390/ijms12128610. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/ijms12128610.
  31. 4.Pandey K.B., Rizvi S.I. Plant polyphenols as dietary antioxidants in human health and disease. Oxid. Med. Cell. Longev. 2009;2:270-278. doi: 10.4161/oxim.2.5.9498. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.4161/oxim.2.5.9498.
  32. 5.Namuli A., Abdullah N., Sieo C., Zuhainis S., Oskoueian E. Phytochemical compounds and antibacterial activity of Jatrophacurcas Linn extracts. J. Med. Plants Res. 2011;5:3982-3990. [Google Scholar].
  33. 6.Hendra R., Ahmad S., Sukari A., Shukor M.Y., Oskoueian E. Flavonoid analyses and antimicrobial activity of various parts of Phaleria macrocarpa (Scheff.) boerl Fruit. Int. J. Mol. Sci. 2011;12:3422-3431. doi: 10.3390/ijms12063422. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/ijms12063422.
  34. 7.Argolo A.C.C., Sant-Ana A.E.G., Pletsch M., Coelho L.C.B.B. Antioxidant activity of leaf extracts from Bauhinia monandra. Bioresour. Technol. 2004;95:229-233. doi: 10.1016/j.biortech.2003.12.014. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biortech.2003.12.014.
  35. 8.Tepe B., Sokmen M., Akpulat H.A., Sokmen A. In vitro antioxidant activities of the methanol extracts of four Helichrysum species from Turkey. Food Chem. 2005;90:685-689. doi: 10.1016/j.foodchem.2004.04.030. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.foodchem.2004.04.030.
  36. 9.Marinova D., Ribarova F., Atanassova M. Total phenolics and total flavonoids in Bulgarian fruits and vegetables. J. Univ. Chem. Technol. Metall. 2005;40:255-260. [Google Scholar].
  37. 10.Pusglove J.W. Tropical Crops: Dicotyledons 1, Dicotyledons 2. Longmans; London, UK: 1968. [Google Scholar].
  38. 11.Apavatjrut P., Anuntalabhochai S., Sirirugsa P., Alisi C. Molecular markers in the identification of some early flowering Curcuma L. (Zingiberaceae) species. Ann. Bot. Lond. 1999;84:529-534. doi: 10.1006/anbo.1999.0936. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1006/anbo.1999.0936.
  39. 12.Lewis M.E. Should we be concerned about herbal remedies. J. Ethnopharmacol. 2001;75:141-164. doi: 10.1016/S0378-8741(00)00394-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/S0378-8741(00)00394-9.
  40. The genomic and bulked segregant analysis of Curcuma alismatifolia revealed its diverse bract pigmentation – PMC. aBIOTECH. DOI: 10.1007/s42994-022-00081-6 · PMID: 36304840.
  41. Akter R, Hasan R, Siddiqua SA, et al. Evaluation of analgesic and antioxidant potential of the leaves of Curcuma alismatifolia Gagnep. Stamford J Pharm Sci. 2008;1:3-9. doi: 10.3329/sjps.v1i1.1779. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3329/sjps.v1i1.1779.
  42. Baudry A, Heim MA, Dubreucq B, et al. TT2, TT8, and TTG1 synergistically specify the expression of BANYULS and proanthocyanidin biosynthesis in Arabidopsis thaliana. Plant J. 2004;39:366-380. doi: 10.1111/j.1365-313X.2004.02138.x. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1365-313X.2004.02138.x.
  43. Bayer PE, Golicz AA, Scheben A, et al. Plant pan-genomes are the new reference. Nat Plants. 2020;6:1389-1389. doi: 10.1038/s41477-020-00776-y. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41477-020-00776-y.
  44. Belwal T, Singh G, Jeandet P, et al. Anthocyanins, multi-functional natural products of industrial relevance: recent biotechnological advances. Biotechnol Adv. 2020;43:107600. doi: 10.1016/j.biotechadv.2020.107600. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.biotechadv.2020.107600.
  45. Bie TD, Cristianini N, Demuth JP, et al. CAFE: a computational tool for the study of gene family evolution. Bioinformatics. 2006;22:1269-1271. doi: 10.1093/bioinformatics/btl097. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/bioinformatics/btl097.
  46. Blum M, Chang HY, Chuguransky S, et al. The InterPro protein families and domains database: 20 years. Nucleic Acids Res. 2021;49:344-354. doi: 10.1093/nar/gkaa977. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/nar/gkaa977.
  47. Bourque G, Burns KH, Gehring M, et al. Ten things you should know about transposable elements. Genome Biol. 2018;19:199. doi: 10.1186/s13059-018-1577-z. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1186/s13059-018-1577-z.
  48. Burton JN, Adey A, Patwardhan RP, et al. Chromosome-scale scaffolding of de novo genome assemblies based on chromatin interactions. Nat Biotechnol. 2013;31:1119-1125. doi: 10.1038/nbt.2727. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/nbt.2727.
  49. Chakraborty A, Mahajan S, Jaiswal SK, et al. Genome sequencing of turmeric provides evolutionary insights into its medicinal properties. Commun Biol. 2021;4:1193. doi: 10.1038/s42003-021-02720-y. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s42003-021-02720-y.
  50. Chan PP, Lin BY, Mak AJ, et al. tRNAscan-SE 2.0: improved detection and functional classification of transfer RNA genes. Nucleic Acids Res. 2021;49:9077-9096. doi: 10.1093/nar/gkab688. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/nar/gkab688.
  51. Chanapan S, Tontiworachai B, Deewatthanawong R, et al. Cloning and sequence analysis of chalcone synthase gene in Curcuma alismatifolia. Acta Hortic. 2017 doi: 10.17660/ActaHortic.2017.1167.43. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.17660/ActaHortic.2017.1167.43.
  52. Chen SF, Zhou YQ, Chen YR, et al. fastp: an ultra-fast all-in-one FASTQ preprocessor. Bioinformatics. 2018;34:884-890. doi: 10.1093/bioinformatics/bty560. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/bioinformatics/bty560.
  53. Bruno Nunez. Curcuma alismatifolia, : tulipe de Siam: des fleurs rose vif. 2019.
  54. Lurdes sarmiento. Curcuma alismatifolia : guide complet d’entretien, de caractéristiques et d’utilisations. 2025.
  55. Claire Geslot. Curcuma (Curcuma alismatifolia). 2014.
ERIC
ERIC
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.

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