Un brise-vue ne sert pas uniquement à cacher la terrasse au voisin qui connaît déjà tout le programme du week-end. En 2026, son choix dépend aussi du vent, de la limite de propriété, du matériau et de la place disponible pour les plantes.
Dans un jardin bio, une clôture ne se pose pas comme un simple décor. Elle modifie la circulation de l’air et la lumière reçue par le potager, les arbustes et les plantes grimpantes. Dès qu’un panneau plein arrive dans une zone exposée, ça négocie sévère avec les rafales.
Le bon choix commence par le site, pas par la photo du catalogue. Quatre familles se dégagent : le panneau plein, le treillis, le bois ou composite, et la canisse. Leur tenue dépend ensuite du support, de la hauteur, de l’exposition et de la qualité de la fixation.
Clôture ou cloison, le jardin joue sur les mots
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Le premier choix ne concerne donc pas le bois ou le bambou. Il concerne l’emplacement. Lorsqu’un écran délimite la propriété, il entre dans la catégorie des clôtures. Les règles locales peuvent alors porter sur la hauteur, la mitoyenneté, la longueur et la position du dispositif.
Avant de creuser, relevez la limite de propriété et interrogez le service urbanisme de la mairie. Ne posez pas un écran au ras de la limite sans avoir vérifié si un retrait est requis. À l’intérieur du jardin, le long d’une terrasse ou entre deux espaces, le cadre est souvent plus souple, mais cela ne dispense pas de contrôler les règles locales. Le voisin qui affirme que « tout le monde fait comme ça » n’est toujours pas un document administratif.
Plein les yeux, plein le vent
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Panneau plein, plein la prise au vent
Un panneau plein empêche l’air de traverser sa surface. Le courant est dévié au-dessus de l’écran, puis forme des remous à l’arrière. Sur une terrasse exposée ou dans un passage entre deux maisons, cette turbulence peut diminuer le confort et mettre les fixations à rude épreuve.
L’occultation est forte, mais la prise au vent l’est aussi. Il faut donc examiner le support, l’ancrage des poteaux et l’exposition avant de retenir cette solution. Une belle hauteur installée sur un sol meuble ne compense pas une fixation sous-dimensionnée.
Ajouré, mais pas à moitié
Un panneau ajouré, un treillage ou une structure décorative laisse passer une partie de l’air et en réduit la vitesse. L’intimité est moins hermétique, mais la transition est plus progressive. Dans un jardin exposé, l’occultation maximale n’est pas automatiquement la solution la plus stable.
Chez Jardin-Bio, on en a débattu : ralentir le vent avec une paroi ajourée, puis ajouter des plantes là où le sol, la lumière et l’arrosage le permettent, donne souvent un écran plus souple au fil des saisons. La grande voile rigide, elle, découvre parfois les joies de la tempête au pire moment.
Treillis, tu m’as vu venir
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Le treillis convient à une intimité progressive. Il peut recevoir des plantes grimpantes ou un filet et cloisonner une terrasse sans fermer complètement le jardin. Un filet fixé sur un treillis peut être colonisé par des concombres. Des tournesols peuvent atteindre près de 2 mètres dans de bonnes conditions.
Cette solution ne fournit pas immédiatement un écran dense. Le semis, la croissance et la saison de végétation imposent leur calendrier. Une plante annuelle peut couvrir la structure en été, puis disparaître en automne. Pour conserver une séparation toute l’année, il faut choisir une plante persistante adaptée au climat ou accepter une vue plus dégagée pendant la mauvaise saison.
Le sol, un organisme vivant qu’on nourrit, conditionne la reprise des plantes. Un compost mûr apporté en surface, une terre drainée et un arrosage suivi au démarrage valent mieux qu’un engrais distribué au hasard. Les racines noyées, elles, ne se laissent pas impressionner par les grandes promesses du voisin.
Bois d’abord, composite ensuite
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Le bois certifié FSC fait partie des options adaptées à une séparation de jardin. Les panneaux en pin ou en épicéa traités en classe 3 ou 4 sont conçus pour mieux supporter les intempéries. Laissés sans peinture, ils grisent progressivement après quelques mois. Ce changement d’aspect peut convenir près des végétaux, à condition d’accepter le vieillissement du matériau.
Le bois demande un entretien régulier si l’on souhaite conserver son aspect et limiter son vieillissement. Le composite réclame généralement moins d’entretien et existe avec des lames horizontales ou verticales, parfois associées à des panneaux décoratifs.
Dans les deux cas, comparez la structure complète plutôt que les seules lames. Les poteaux, les platines, les fixations et le support comptent dans le budget comme dans la résistance au vent. Un panneau bon marché mal fixé reste une mauvaise affaire, même avec une jolie photo de catalogue.
Canisse-moi si tu peux
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Les canisses en roseau, les brandes de bruyère et les cannes de bambou créent une occultation plus souple. Elles peuvent habiller une clôture existante ou former une séparation légère autour d’une terrasse. Leur fixation gagne à reposer sur un cadre en bois ou sur un grillage, plutôt que sur quelques attaches isolées.
Le mot « naturel » ne règle ni l’exposition ni la tenue mécanique. Une canisse mal tendue, soumise aux rafales ou fixée sur un support fragile vieillira plus vite qu’un écran correctement installé. Il faut aussi vérifier l’état de la clôture qui la reçoit.
Conserver une clôture existante et l’habiller limite les poteaux, les fondations et les déchets de chantier. Dans un jardin bio, cette sobriété matérielle a davantage de sens qu’un remplacement complet décidé sur un coup de tête. Pas franchement glamour, le vieux grillage, mais il peut encore avoir du service à rendre.
Pose sans pause, cinq gestes qui évitent la casse
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Une pose réussie commence avant l’ouverture du carton. La procédure reste simple si l’on vérifie ce qui disparaît ensuite sous les poteaux, les attaches et les plantes.
Repérez la limite de propriété, l’orientation du soleil et le côté d’où viennent les vents dominants.
Mesurez la longueur à couvrir et la hauteur nécessaire pour masquer les regards depuis la terrasse ou les fenêtres.
Choisissez un panneau plein si l’occultation est prioritaire, ou un modèle ajouré si la zone reçoit de fortes rafales.
Adaptez les poteaux et les fixations au support. Un grillage, une dalle et un sol meuble ne se travaillent pas de la même façon.
Contrôlez l’ensemble après les premières pluies et les premiers coups de vent, puis attachez les plantes sans enfermer leurs tiges dans la structure.
Le panneau qui prend le mur
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Le conseil généraliste atteint vite ses limites. Un écran plein peut convenir derrière une terrasse abritée, mais devenir excessif sur une parcelle ouverte. Une canisse peut suffire pour couper une vue latérale, tandis qu’un treillis végétalisé répond mieux à une intimité saisonnière.
La décision dépend de la distance avec le voisin, de la hauteur des regards, du vent, de la lumière disponible et de l’entretien accepté. Il faut aussi distinguer intimité visuelle et confort climatique. Un panneau ne remplace pas un arbre, une haie ou une plantation diversifiée. Il ne nourrit pas les pollinisateurs et ne crée pas, à lui seul, une biodiversité fonctionnelle.
En revanche, une structure ajourée peut servir de support à des plantes et laisser une place aux fleurs et aux insectes autour de la clôture. Un brise-vue bien choisi cache ce qui doit l’être sans transformer le jardin en boîte fermée. Pour le reste, la météo garde le dernier mot, et le voisin aura probablement une nouvelle théorie sur la meilleure façon de fixer une canisse.
Sources et références scientifiques
Detection of Reproducible Major Effect QTL for Petal Traits in Garden Roses – PMC. Plants (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/plants10050897 · PMID: 33946713.
1.Rombach M., Widmar N., Byrd E., Bitsch V. Understanding preferences of German flower consumers: The desire for sustained beauty. Int. J. Retail Distrib. Manag. 2018;46:560-576. doi: 10.1108/IJRDM-10-2017-0229. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1108/IJRDM-10-2017-0229.
Vries D.P., Dubois L.A.M. On the transmission of the yellow flower colour from Rosa foetida to recurrent flowering hybrid tea-roses. Euphytica. 1978;27:205-210. doi: 10.1007/BF00039136. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/BF00039136.
bener T. Genetics: Inheritance of characteristics. In: Roberts A.V., Debener T., Gudin S., editors. Encyclopedia of Rose Science. Elsevier, Academic Press; Oxford, UK: 2003. pp. 286-292. [Google Scholar].
4.Baldermann S., Yang Z., Sakai M., Fleischmann P., Watanabe N. Volatile constituents in the scent of roses. Floric. Ornam. Biotech. 2009;3:89-97. [Google Scholar].
5.Magnard J.-L., Roccia A., Caissard J.-C., Vergne P., Sun P., Hecquet R., Dubois A., Oyant L.H.-S., Jullien F., Nicolè F., et al. Biosynthesis of monoterpene scent compounds in roses. Science. 2015;349:81-83. doi: 10.1126/science.aab0696. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1126/science.aab0696.
6.Roccia A., Oyant L.H.-S., Cavel E., Caissard J.-C., Machenaud J., Thouroude T., Jeauffre J., Bony A., Dubois A., Vergne P., et al. Biosynthesis of 2-Phenylethanol in Rose Petals Is Linked to the Expression of One Allele of RhPAAS. Plant Physiol. 2019;179:1064-1079. doi: 10.1104/pp.18.01468. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1104/pp.18.01468.
7.Scalliet G., Piola F., Douady C.J., Rety S., Raymond O., Baudino S., Bordji K., Bendahmane M., Dumas C., Cock J.M., et al. Scent evolution in Chinese roses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008;105:5927-5932. doi: 10.1073/pnas.0711551105. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1073/pnas.0711551105.
8.Spiller M., Berger R.G., Debener T. Genetic dissection of scent metabolic profiles in diploid rose populations. Theor. Appl. Genet. 2010;120:1461-1471. doi: 10.1007/s00122-010-1268-y. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00122-010-1268-y.
9.Sun P., Dégut C., Réty S., Caissard J.-C., Hibrand-Saint Oyant L., Bony A., Paramita S.N., Conart C., Magnard J.-L., Jeauffre J., et al. Functional diversification in the Nudix hydrolase gene family drives sesquiterpene biosynthesis in Rosa × wichurana. Plant J. 2020;104:185-199. doi: 10.1111/tpj.14916. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/tpj.14916.
10.Sun Y., Wang W., Zhao L., Zheng C., Ma F. Changes in volatile organic compounds and differential expression of aroma-related genes during flowering of Rosa rugosa ‘Shanxian’. Hortic. Environ. Biotechnol. 2019;60:741-751. doi: 10.1007/s13580-019-00166-0. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s13580-019-00166-0.
11.Varshney R., Graner A., Sorrells E. Genomics-assisted breeding for crop improvement. Trends Plant Sci. 2005;10:621-630. doi: 10.1016/j.tplants.2005.10.004. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tplants.2005.10.004.
12.Myles S., Peiffer J., Brown P.J., Ersoz E.H., Zhang Z., Costich D.E., Buckler E.S. Association Mapping: Critical Considerations Shift from Genotyping to Experimental Design. Plant Cell. 2009;21:2194-2202. doi: 10.1105/tpc.109.068437. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1105/tpc.109.068437.
Phenotypic and Genotypic Characterization and Correlation Analysis of Pea (Pisum sativum L.) Diversity Panel – PMC. Plants (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/plants11101321 · PMID: 35631746.
1.Faostat Statistics Crop and Livestock Products-Statistics on Area Harvested of Dry Pea in European Region. [(accessed on 1 March 2022)]. Available online:.
2.Ismail B.P., Senaratne-Lenagala L., Stube A., Brackenridge A. Protein demand: Review of plant and animal proteins used in alternative protein product development and production. Anim. Front. 2020;10:53-63. doi: 10.1093/af/vfaa040. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1093/af/vfaa040.
3.Westhoek H., Rood T., Van Den Berg M., Janse J., Nijdam D., Reudink M., Stehfest E., Lesschen J.P., Oenema O., Woltjer G.B. The Protein Puzzle: The Consumption and Production of Meat, Dairy and Fish in the European. PBL Netherlands Environmental Assessment Agency; Den Haag, The Netherlands: 2011. pp. 123-144. [Google Scholar].
4.Lindsay D.L., Jha A.B., Arganosa G., Glahn R., Warkentin T.D. Agronomic Performance in Low Phytic Acid Field Peas. Plants. 2021;10:1589. doi: 10.3390/plants10081589. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/plants10081589.
5.Jha A.B., Warkentin T.D. Biofortification of Pulse Crops: Status and Future Perspectives. Plants. 2020;9:73. doi: 10.3390/plants9010073. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.3390/plants9010073.
6.Harmankaya M., Özcan M.M., KaradaŞ S., Ceyhan E. Protein and mineral contents of pea (Pisum sativum L.) genotypes grown in central Anatolian region of Turkey. South West. J. Hortic. Biol. Environ. 2010;1:159-165. [Google Scholar].
7.Lam A.C.Y., Can Karaca A., Tyler R.T., Nickerson M.T. Pea protein isolates: Structure, extraction, and functionality. Food Rev. Int. 2018;34:126-147. doi: 10.1080/87559129.2016.1242135. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1080/87559129.2016.1242135.
8.Živanov D., Savić A., Katanski S., Karagić Đ., Milošević B., Milić D., Đorđević V., Vujić S., Krstić Đ., Ćupina B. Intercropping of field pea with annual legumes for increasing grain yield production. Zemdirb. Agric. 2018;105:235-242. doi: 10.13080/z-a.2018.105.030. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.13080/z-a.2018.105.030.
9.Herman E. Mitigation of Soybean Allergy by Development of Low Allergen Content Seeds. ACS Symp. Ser. 2008;1001:431-445. [Google Scholar].
10.Acar R., Özel A., Sumiahadi A., Koç N. The Importance of Legume Forage Crops As Green Manure; Proceedings of the International Soil Congress 2019, Successful Transformation toward Land Degradation Neutrality: Future Perspective; Ankara, Turkey. 17-19 June 2019. [Google Scholar].
11.Stone J.L. Peas as a field crop. Small Farmer’s J. 2018;42 [Google Scholar].
12.Krstić Đ., Vujić S., Jaćimović G., D’Ottavio P., Radanović Z., Erić P., Ćupina B. The Effect of Cover Crops on Soil Water Balance in Rain-Fed Conditions. Atmosphere. 2018;9:492. doi: 10.3390/atmos9120492. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/atmos9120492.
Changes of the Aroma Composition and Other Quality Traits of Blueberry ‘Garden Blue’ during the Cold Storage and Subsequent Shelf Life – PMC. Foods (Basel, Switzerland). DOI: 10.3390/foods9091223 · PMID: 32887416.
1.Howard L.R., Prior R.L., Liyanage R., Lay J.O. Processing and Storage Effect on Berry Polyphenols: Challenges and Implications for Bioactive Properties. J. Agric. Food Chem. 2012;60:6678-6693. doi: 10.1021/jf2046575. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/jf2046575.
2.Sater H.M., Bizzio L.N., Tieman D.M., Muñoz P.D. A Review of the Fruit Volatiles Found in Blueberry and Other Vaccinium Species. J. Agric. Food Chem. 2020;68:5777-5786. doi: 10.1021/acs.jafc.0c01445. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/acs.jafc.0c01445.
leb O.J., Mahajan P.V., Al-Said A.J., Opara U.L. Modified Atmosphere Packaging Technology of Fresh and Fresh-cut Produce and the Microbial Consequences, A Review. Food Bioprocess Technol. 2013;6:303-329. doi: 10.1007/s11947-012-0932-4. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1007/s11947-012-0932-4.
4.Wang C., Gao Y., Tao Y., Wu X. Influence of γ-irradiation on the reactive-oxygen metabolism of blueberry fruit during cold storage. Innov. Food Sci. Emerg. 2017;41:397-403. doi: 10.1016/j.ifset.2017.04.007. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.ifset.2017.04.007.
5.Bounous G., Giacalone G., Guarinoni A., Peano C. Modified atmosphere storage of high bush blueberry. Acta Hortic. 1997;446:197-203. doi: 10.17660/ActaHortic.1997.446.29. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.17660/ActaHortic.1997.446.29.
6.Almenar E., Samsudin H., Auras R., Harte B., Rubino M. Postharvest shelf life extension of blueberries using a biodegradable package. Food Chem. 2008;110:120-127. doi: 10.1016/j.foodchem.2008.01.066. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.foodchem.2008.01.066.
7.Reque P.M., Steffens R.S., Jablonski A., Flôres S.H., Rios A.D.O., De Jong E.V. Cold storage of blueberry (Vaccinium spp.) fruits and juice: Anthocyanin stability and antioxidant activity. J. Food Compos. Anal. 2014;33:111-116. doi: 10.1016/j.jfca.2013.11.007. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.jfca.2013.11.007.
8.Villarreal N.M., Bustamante C.A., Civello P.M., Martinez G.A. Effect of ethylene and 1-MCP treatments on strawberry fruit ripening. J. Sci. Food Agric. 2010;90:683-689. doi: 10.1002/jsfa.3868. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1002/jsfa.3868.
9.Duan W., Sun P., Chen L., Gao S., Shao W., Li J. Comparative analysis of fruit volatiles and related gene expression between the wild strawberry Fragaria pentaphylla and cultivated Fragaria × ananassa. Eur. Food Res. Technol. 2018;244:57-72. doi: 10.1007/s00217-017-2935-x. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1007/s00217-017-2935-x.
10.Maclean D., Nesmith D.S. Rabbiteye Blueberry Postharvest Fruit Quality and Stimulation of Ethylene Production by 1-Methylcyclopropene. Hortscience. 2011;46:1278-1281. doi: 10.21273/HORTSCI.46.9.1278. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.21273/HORTSCI.46.9.1278.
11.Fu X.M., Cheng S.H., Zhang Y.Q., Du B., Feng C., Zhou Y., Mei X., Jiang Y.M., Duan X.W., Yang Z.Y. Differential responses of four biosynthetic pathways of aroma compounds in postharvest strawberry (Fragaria × ananassa Duch.) under interaction of light and temperature. Food Chem. 2017;221:356-364. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.10.082. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.foodchem.2016.10.082.
12.Forney C.F. Horticultural and other Factors Affecting Aroma Volatile Composition of Small Fruit. HortTechnology. 2001;11:529-538. doi: 10.21273/HORTTECH.11.4.529. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.21273/HORTTECH.11.4.529.
Ultrasound-Assisted Sustainable Processing of Garden Cress Juice: Enhancing Bioactive Compounds and Bioaccessibility through XGBoost Optimization – PMC. ACS omega. DOI: 10.1021/acsomega.5c08691 · PMID: 41502734.
Ma T., Wang J., Lan T., Bao S., Zhao Q., Sun X., Liu X.. How to Comprehensively Improve Juice Quality: A Review of the Impacts of Sterilization Technology on the Overall Quality of Fruit and Vegetable Juices in 2010-2021, an Updated Overview and Current Issues. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2024;64(8):2197-2247. doi: 10.1080/10408398.2022.2121806. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/10408398.2022.2121806.
Tufail T., Khan T., Bader Ul Ain H., Morya S., Shah M. A.. Garden Cress Seeds: A Review on Nutritional Composition, Therapeutic Potential, and Industrial Utilization. Food Sci. Nutr. 2024;12(6):3834-3848. doi: 10.1002/fsn3.4096. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1002/fsn3.4096.
Kumar N., Singh S.. Nutritional Composition, Nutraceutical Aspects, and Medicinal Benefits of Garden Cress (Lepidium Sativum) Seeds – A Geographical and Processing Perspective. Trends Food Sci. Technol. 2024;154:104791. doi: 10.1016/j.tifs.2024.104791. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.tifs.2024.104791.
Keutgen N., Hausknecht M., Tomaszewska-Sowa M., Keutgen A. J.. Nutritional and Sensory Quality of Two Types of Cress Microgreens Depending on the Mineral Nutrition. Agronomy. 2021;11(6):1110. doi: 10.3390/agronomy11061110. [DOI] [Google Scholar]. doi:10.3390/agronomy11061110.
Yildirim E., Ekinci M., Turan M., Ağar G., Dursun A., Kul R., Alim Z., Argin S.. Humic + Fulvic Acid Mitigated Cd Adverse Effects on Plant Growth, Physiology and Biochemical Properties of Garden Cress. Sci. Rep. 2021;11(1):1-8. doi: 10.1038/s41598-021-86991-9. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41598-021-86991-9.
Gupta S., Gupta R.. Research Update on the Therapeutic Potential of Garden Cress (Lepidium Sativum Linn.) with Threatened Status. Curr. Drug Res. Rev. 2024;16(3):369-380. doi: 10.2174/0125899775273877231023102011. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.2174/0125899775273877231023102011.
Hussain M., Gantumur M. A., Manzoor M. F., Hussain K., Xu J., Aadil R. M., Qayum A., Ahmad I., Zhong H., Guan R.. Sustainable Emerging High-Intensity Sonication Processing to Enhance the Protein Bioactivity and Bioavailability: An Updated Review. Ultrason. Sonochem. 2023;97:106464. doi: 10.1016/j.ultsonch.2023.106464. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.ultsonch.2023.106464.
Nasir G., Zaidi S., Ahmad S., Asfaq, Allai F. M., Ahmad F., Tarafdar A.. Current Status of Technological Advancement of Ultrasound Processing in the Food Industry and Its SWOT Analysis. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2025;65(26):5200-5217. doi: 10.1080/10408398.2024.2405992. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1080/10408398.2024.2405992.
Wang H., Deng L., Huang G.. Ultrasound-Assisted Extraction and Value of Active Substances in Muxu. Ultrason. Sonochem. 2025;113:107220. doi: 10.1016/j.ultsonch.2024.107220. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.ultsonch.2024.107220.
Pang L., Chen C., Liu M., Huang Z., Zhang W., Shi J., Yang X., Jiang Y.. A Comprehensive Review of Effects of Ultrasound Pretreatment on Processing Technologies for Food Allergens: Allergenicity, Nutritional Value, and Technofunctional Properties and Safety Assessment. Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2025;24(1):e70100. doi: 10.1111/1541-4337.70100. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/1541-4337.70100.
Zhang M., Zhou C., Ma L., Su W., Jiang J., Hu X.. Influence of Ultrasound on the Microbiological, Physicochemical Properties, and Sensory Quality of Different Varieties of Pumpkin Juice. Heliyon. 2024;10(6):e27927. doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e27927. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.heliyon.2024.e27927.
Khan M. I. H., Sablani S. S., Nayak R., Gu Y.. Machine Learning-Based Modeling in Food Processing Applications: State of the Art. Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2022;21(2):1409-1438. doi: 10.1111/1541-4337.12912. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/1541-4337.12912.
Bruno Nunez. Comment créer un espace d’intimité au jardin?. 2019.
Panneau separation jardin: au meilleur prix | Tecnomat / ex Bricoman.
Eric est jardinier passionné depuis 22 ans. Il partage régulièrement ses conseils et astuces de jardinage sur son blog "Jardin-Bio", pour aider les débutants comme les jardiniers confirmés à entretenir et faire évoluer leur jardin.
